PMC

Pseudomonas aeruginosa er en allestedsnærværende miljømæssig gram-negativ bakterie, der findes i jord og vand. Det er også et opportunistisk patogen, der forårsager infektioner hos personer med medfødte immundefekter, herunder cystisk fibrose (CF) patienter (8). P. aeruginosa møder miljøer med lavt iltindhold i jord og vand. Bevis tyder på, at bakterier hos mennesker med CF i det mindste delvist kan være i et iltfattigt miljø inden for mucopurulente masser eller biofilm i luftvejene (19). P. aeruginosa er i stand til at vokse anaerobt i nærvær af terminale elektronacceptorer, såsom nitrat (NO3−), nitrit (NO2−) og lattergas (N2O), eller når l-arginin er et substrat for vækst (21). CF-luftvejsslimet er tilstrækkeligt rig på NO3− og NO2-til at understøtte den anaerobe vækst af P. aeruginosa (7, 19). I denne undersøgelse blev der udført en sammenligning af P. aeruginosa-proteomet under vækst i nærvær og fravær af ilt.

P. aeruginosa stamme PAO1 opnået fra Steve Lory (Harvard Medical School, Boston, MA) blev dyrket i 125 ml kolber i Luria bouillon (LB) suppleret med 1% KNO3 med omrystning ved 200 o / min ved 37 liter C til aerob vækst. Anaerob vækst blev afsluttet som tidligere beskrevet (9) i 80 ml medium i 100 ml Hvedeserumflasker (Fisher Scientific) med gummipropper. Mediet blev frataget ilt ved at blive udsat for boblende med N2-gas i 1 time. Til både aerobe og anaerobe forhold blev bakterier høstet i den sene logaritmiske vækstfase, på hvilket tidspunkt celletætheden (optisk densitet ved 600 nm) af den anaerobe kultur var 44% af densiteten af den aerobe kultur. Der var ingen signifikant forskel mellem pHs for de høstede kulturer (pH 7,6 for den anaerobe Kultur og pH 7,4 for den aerobe kultur). Lige store mængder af denatureret og reduceret helcelleprotein (2.0 mg fra hver væksttilstand) blev mærket med enten let (12c) eller tungt (13C) spalteligt isotopkodet affinitetsmærke (ICAT) reagens (Applied Biosystems, Foster City, CA), behandlet og analyseret som tidligere beskrevet (3). De rapporterede data er gennemsnittet af mindst to uafhængige eksperimenter.

seks hundrede ti P. aeruginosa-proteiner blev identificeret og kvantificeret under anvendelse af ICAT (for en komplet liste over proteiner, se tabel S1 i det supplerende materiale). Blandt 151 proteiner, hvis overflod ændrede sig under anaerob vækst, var 76 højere i overflod (tabel (Table1)1) og 75 var lavere i overflod (tabel (Table2).2). Som forventet blev 13 proteiner, der deltager i anaerob vækst og denitrifikation (inklusive produkter af Nir -, nos-og nar-gener) udtrykt ved højere niveauer under anaerob vækst (tabel (Table1).1). Disse resultater antyder, at de observerede ændringer i proteinindhold inkluderer dem, der specifikt skyldes vækst ved forskellige iltniveauer.

tabel 1.

P. aeruginosa proteiner med øget overflod under anaerob vækst

Genea Protein Gennavn nb Ratioc SD
PA0025 * Shikimate dehydrogenase aroE 3 1.79 0.04
PA0130 sandsynlig aldehyddehydrogenase 10 2.28 0.22
PA0132 Beta-alanine-pyruvate transaminase 10 1.64 0.31
PA0286 Probable fatty acid desaturase 5 4.61 0.42
PA0300 Polyamine transport protein spuD 7 1.65 0.17
PA0321 Probable acetylpolyamine aminohydrolase 1 1.91 NAd
PA0336 Nudiks hydrolase YgdP ygdP 13 1.54 0.40
PA0396 trækninger motilitet protein PilU pilU 8 1.88 0.25
PA0408 trækninger motilitet protein PilG pilG 2 1.63 0.10
PA0413 komponent af signaltransduktionssystem chpA 12 2.10 0.35
PA0520 Regulatory protein NirQ nirQ 59 2.21 0.33
PA0655 Hypothetical protein 34 2.63 0.41
PA0658 Probable short-chain dehydrogenase 1 1.96 NA
PA0844 Hemolytic phospholipase C precursor plcH 1 1.72 NA
PA0867 Hypothetical protein 4 2.33 0.12
PA0934 GTP pyrophosphokinase relA 6 1.70 0.08
PA0936 LPS biosynthetic protein LpxO2 lpxO2 14 2.17 0.35
PA1155 Ribonucleoside reductase, small chain nrdB 3 12.15 5.64
PA1156 Ribonucleoside reductase, large chain nrdA 4 3.57 1.37
PA1398 Hypothetical protein 1 1.56 NA
PA1566 Conserved hypothetical protein 3 3.12 0.58
PA1681 Chorismate synthase aroC 5 1.65 0.14
PA1766 hypotetisk protein 3 1.60 0.13
PA1847 konserveret hypotetisk protein 1 1.88 NA
PA1919 sandsynlig radikal-aktiverende 5 7.34 0.98
PA1920 konserveret hypotetisk protein 15 10.80 5.21
PA2119 Alcohol dehydrogenase (Zn dependent) 25 1.84 0.22
PA2127 Conserved hypothetical protein 6 2.46 0.12
PA2323 Probable glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase 2 1.95 NA
PA2567 Hypothetical protein 1 1.54 NA
PA2945 Conserved hypothetical protein 2 2.36 0.30
PA2991 Soluble pyridine nucleotide transhydrogenase sth 20 1.93 0.37
PA2994 NA+-translocating NADH:quinone oxidoreductase nqrF 15 1.60 0.27
PA2999* NA+-translocating NADH:ubiquinone oxidoreductase nqrA 5 1.74 0.11
PA3002 Transcription-repair coupling protein Mfd mfd 2 1.52 0.06
PA3150 LPS biosynthesis protein WbpG wbpG 1 3.72 NA
PA3185 Hypothetical protein 4 1.82 0.08
PA3391 Regulatory protein NosR nosR 5 7.75 0.98
PA3392 Nitrous oxide reductase precursor nosZ 69 3.65 0.72
PA3394 NosF protein nosF 9 4.09 0.46
PA3438 GTP cyclohydrolase I precursor folEI 1 5.58 NA
PA3515 Hypothetical protein 1 4.21 NA
PA3562* Probable phosphotransferase system enzyme I 3 2.91 0.17
PA3694 Hypothetical protein 4 1.92 0.07
PA3871 Probable peptidyl-prolyl cis-trans isomerase, PpiC type 3 2.50 0.64
PA3873 Respiratory nitrate reductase delta chain narJ 1 3.20 NA
PA3874 respiratorisk nitratreduktase beta kæde narH 67 7.89 2.83
PA3875 respiratorisk nitratreduktase alfa kæde narG 35 7.70 3.23
PA3880 konserveret hypotetisk protein 8 3.88 0.98
PA3886 hypotetisk protein 1 7.25 NA
PA3895 Probable transcriptional regulator 2 1.49 0.00
PA3913 Probable protease 1 5.30 NA
PA3914* Molybdenum cofactor biosynthetic protein A1 moeA1 21 3.41 0.63
PA3915* Molybdopterin biosynthetic protein B1 moaB1 5 4.40 0.72
PA3918* Molybdopterin biosynthetic protein C moaC 23 1.88 0.41
PA3958 Hypothetical protein 1 2.29 NA
PA4180 Probable acetolactate synthase large subunit 2 2.16 0.53
PA4811 Nitrate-inducible formate dehydrogenase, beta subunit fdnH 3 5.85 1.85
PA4812 formatdehydrogenase-o, større underenhed fdnG 4 3.46 0.64
PA4868 Urease alpha underenhed ureC 1 1.51 NA
PA4922 precursor Acu 4 2.96 0.81
PA5005 sandsynligvis carbamoyl transferase 42 1.59 0.24
PA5011 Heptosyltransferase til vaac 4 1.49 0.17
PA5012 Heptosyltransferase II vaaf 6 1.45 0.11
PA5015 Pyruvatdehydrogenase aceE 111 1.98 0.42
PA5064 hypotetisk protein 1 1.93 NA
PA5223 UbiH protein ubiH 3 1.67 0.10
PA5296 ATP-dependent DNA helicase Rep rep 2 1.77 0.00
PA5300 Cytochrome c5 cycB 13 1.91 0.21
PA5332 Catabolite repression control protein crc 3 1.90 0.21
PA5440 Probable peptidase 1 18.54 NA
PA5496* Hypothetical protein 8 6.46 2.07
PA5497* Hypothetical protein 10 11.28 3.17
PA5508 Probable glutamine synthetase 11 2.73 0.26
PA5564 Glucose hæmmet division protein B gidB 2 1.53 0.02
agenser markeret med en stjerne (*) blev identificeret som opregulerede under anaerob vækst (1).
bantal peptider identificeret og kvantificeret for hvert protein.
cværdier repræsenterer relativ protein overflod, eller forholdet mellem proteinekspression i celler dyrket anaerobt til proteinekspression i celler dyrket aerobt.
dNA, Ikke relevant.

tabel 2.

P. aeruginosa proteiner med nedsat overflod under anaerob vækst

Genea Proteine Gennavn nb Ratioc SD
PA0085 konserveret hypotetisk protein 3 2.15 0.26
PA0100 hypotetisk protein 1 1.53 NAd
PA0128 Conserved hypothetical protein 9 2.10 0.35
PA0139 Alkyl hydroperoxide reductase subunit C ahpC 655 2.50 1.29
PA0195 Still frameshift pyridine nucleotide transhydrogenase pntA 10 2.21 0.55
PA0399 Cystathionine beta-synthase 6 3.39 0.52
PA0447* Glutaryl-CoA dehydrogenase gcdH 24 5.30 1.04
PA0534 Conserved hypothetical protein 4 5.46 1.51
PA0588 Conserved hypothetical protein 78 5.56 2.52
PA0746 Probable acyl-CoA dehydrogenase 2 2.52 0.51
PA0853 Probable oxidoreductase 16 2.19 0.30
PA0854 Fumarate hydratase fumC2 9 2.36 0.34
PA0870 Aromatic amino acid aminotransferase phhC 24 1.74 0.22
PA0871 Pterin-4-alpha-carbinolamine dehydratase phhB 27 2.37 0.57
PA0872 Phenylalanine-4-hydroxylase phhA 60 2.11 0.65
PA0916 Conserved hypothetical protein 6 1.93 0.28
PA0997* Quinolone signal biosynthesis protein pqsB 3 15.54 6.73
PA0998* Quinolone signal biosynthesis protein pqsC 5 9.11 3.39
PA0999* 3-Oxoacyl- synthase III pqsD 12 5.62 1.50
PA1002* Anthranilate synthase component II phnB 1 2.30 NA
PA1228 Hypothetical protein 13 2.55 0.52
PA1529 DNA ligase lig 21 2.50 0.33
PA1574 Conserved hypothetical protein 1 2.25 NA
PA1662 Probable ClpA/B-type protease 2 2.65 0.27
PA1756 3′-Phosphoadenosine-5′-phosphosulfate reductase cysH 3 2.89 0.13
PA1772 Probable methyltransferase 4 2.34 0.43
PA1894 Hypothetical protein 9 2.48 0.94
PA1964 Probable ATP-binding component of ABC transporter 1 1.00 NA
PA2001 Acetyl-CoA acetyltransferase atoB 149 1.74 1.11
PA2007 Maleylacetoacetate isomerase maiA 10 2.45 0.47
PA2008 Fomarylacetaacetase fahA 47 11.02 4.75
PA2009 Homogentisat 1,2-dioksygenase hmgA 4 20.39 11.50
PA2012 * sandsynlig acyl-CoA alfa-kæde 7 2.24 0.19
PA2014 * sandsynlig ACL-CoA betakæde 69 2.14 0.44
PA2044 Hypothetical protein 4 3.49 0.24
PA2069 Probable carbamoyl transferase 10 4.11 1.13
PA2081 Hypothetical protein 4 2.25 0.12
PA2112* Conserved hypothetical protein 28 3.94 0.90
PA2116 Conserved hypothetical protein 35 3.67 0.97
PA2194 Hydrogen cyanide synthase HcnB hcnB 9 3.26 0.50
PA2195 Hydrogen cyanide synthase HcnC hcnC 3 4.11 0.15
PA2247 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (alpha subunit) bkdA1 7 3.54 1.00
PA2248 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (beta subunit) bkdA2 59 2.80 1.07
PA2250 Lipoamide dehydrogenase Val lpdV 18 2.79 0.59
PA2366* Conserved hypothetical protein 1 2.70 NA
PA2552* Probable acyl-CoA dehydrogenase 13 1.99 0.70
PA2553* Probable acyl-CoA thiolase 48 2.17 0.50
PA2555* Probable AMP-binding enzyme 10 2.22 0.56
PA2850 Organic hydroperoxide resistance protein ohr 6 2.26 0.37
PA2939 Probable aminopeptidase 3 2.67 0.80
PA2981 Tetraacyldisaccharide 4′-kinase lpxK 1 13.49 NA
PA3049 Ribosome modulation factor rmf 15 3.84 0.92
PA3195 Glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase gapA 1 2.76 NA
PA3327 Probable nonribosomal peptide synthetase 1 2.16 NA
PA3328 Probable FAD-dependent monooxygenase 6 4.58 1.28
PA3329* Hypothetical protein 1 2.08 NA
PA3331 Cytochrome P450 17 5.10 2.00
PA3347 Hypothetical protein 4 1.96 0.20
PA3365 Probable chaperone 1 2.35 NA
PA3366 Aliphatic amidase amiE 1 2.00 NA
PA3481 Conserved hypothetical protein 1 1.54 NA
PA3537 Ornithine carbamoyltransferase, anabolic argF 1 5.57 NA
PA3569 3-Hydroxyisobutyrate dehydrogenase mmsB 25 3.67 0.94
PA3570 Methylmalonate-semialdehyde dehydrogenase mmsA 1 3.17 NA
PA3842 Probable chaperone 8 3.17 1.44
PA3919* Conserved hypothetical protein 7 2.19 0.36
PA4015 Conserved hypothetical protein 11 2.11 0.67
PA4129* Hypothetical protein 3 3.75 1.17
PA4132 Conserved hypothetical protein 6 2.36 1.11
PA4217 Flavin-containing monooxygenase phzS 5 5.09 1.26
PA4362 hypotetisk protein 2 2.17 0.29
PA4412 * Murg protein murG 1 3.28 NA
PA4498 sandsynlig metallopeptidase 4 2.00 0.06
PA5100 Urocanase hutU 10 4.50 1.23
PA5410 sandsynlig ringhydroksylerende dioksygenase, alfa-underenhed 1 2.76 NA
agenser markeret med en stjerne (*) blev identificeret som nedreguleret under anaerob vækst (1).
bantal peptider identificeret og kvantificeret for hvert protein.
cværdier repræsenterer relativ protein overflod, eller forholdet mellem proteinekspression i celler dyrket aerobt til proteinekspression i celler dyrket anaerobt.
dNA, Ikke relevant.
eCoA, coensym A; FAD, flavin adenindinukleotid.

ændringerne i det detekterede proteom kunne også afspejle forskelle i al densitetsafhængig regulering ud over virkningerne af iltspænding i betragtning af den lavere relative celletæthed i den høstede anaerobe kultur. Faktisk er 29 proteiner detekteret i lavere overflod i anaerobt dyrkede celler kodet af gener, der tidligere er vist at være kvorum sensing induceret (5, 16, 17). Disse omfatter underenhederne Hydrogencyanidsyntase HcnB og HcnC; Phnb (tabel (Table2).2). I overensstemmelse med vores resultater blev hcn-og PKS-gener også fundet at være transkriptionelt undertrykt under anaerob vækst ved en nylig DNA-mikroarray-analyse ved hjælp af aerobe og anaerobe kulturer høstet ved samme celletæthed (1) (tabel (Table22).

at identificere udskilt P. aeruginosa-proteiner med ændrede niveauer under anaerob vækst blev Kultur-supernatantproteiner koncentreret (11) og adskilt af natriumdodecylsulfat-polyacrylamidgelelektroforese (SDS-PAGE) (Fig. (Fig.1).1). Fire coomassie-farvede proteinbånd, svarende til differentielt udtrykte proteiner, blev identificeret og analyseret som i en tidligere undersøgelse (4) (Fig. (Fig.1).1). Overfloden af tre udskillede proteiner syntes at falde under anaerob vækst: CbpD chitin-bindende protein, LasB elastase og et protein med ukendt funktion kodet af PA0572. Tidligere proteomiske undersøgelser viste, at alle tre af disse proteiner er kvorum sensing induceret (11). Et protein syntes at være forøget i overflod under anaerob vækst og blev identificeret som enten det flagellære filamentprotein FliC eller det flagellære cappingprotein FliD (på grund af overlapningen i karakteristika for disse to proteiner).

P. aeruginosa udskilles proteiner udtrykt under anaerob vækst. P. aeruginosa-kultur supernatantproteiner blev adskilt med 12% SDS-side og detekteret ved farvning med Coomassie. Proteiner, der ændrede sig i overflod under anaerob vækst (i forhold til aerob vækst) er mærket. – O2, anaerob vækst; + O2, aerob vækst.

de fleste P. aeruginosa ydre membranproteiner indeholder ikke cysteinrester og kan derfor ikke analyseres af ICAT (4). Derfor blev to-dimensionel (2D) side brugt som en komplementær metode (4). Flere ydre membranproteiner (Fig. (Fig.2) 2) blev udskåret fra 2D-gelen og identificeret (4). OprE syntes at stige i overflod under anaerob vækst, mens OprF og OprH syntes at falde i overflod (Fig. (Fig.2).2). Alle tre proteiner vandrede som flere arter under isoelektrisk fokusering (Fig. (Fig.2).2). Nedsat overflod af OprF under anaerob vækst blev bekræftet ved immunoblotting af ydre membranproteiner (data ikke vist) ved anvendelse af et polyklonalt anti-OprF antiserum (en gave fra Robert Hancock, University of British Columbia i Vancouver, Canada).

P. aeruginosa ydre membranproteiner udtrykt under anaerob vækst. Ydre membranproteiner blev adskilt med 12% 2D-side og detekteret ved farvning med Coomassie. Proteiner blev adskilt i den første dimension ved isoelektrisk fokusering (IEF) ved pI-intervaller på 4 til 7 (A) og 6 til 11 (B). Proteiner, der ændrede sig i overflod under anaerob vækst (i forhold til aerob vækst) er mærket med pile. – O2, anaerob vækst; + O2, aerob vækst.

blandt P. aeruginosa-proteinerne, der viste øget overflod under anaerob vækst (tabel (Table1;1; Fig. Fig.1), 1), flere bidrager til funktioner involveret i dannelsen og udviklingen af biofilm. Disse proteiner inkluderer katabolit-undertrykkelseskontrolproteinet Crc og trækningsmotilitetsproteinerne PilU, PilG og ChpA (12, 13, 18). I overensstemmelse med et øget niveau af Crc i anaerobt dyrkede celler (tabel (Tabel1),1) blev kendte mål for Crc-undertrykkelse reduceret i overflod (tabel (Tabel2), 2), inklusive hmgA-og bkd-genprodukterne (6, 10). ChpA og PilG er komponenter i et komplekst reguleringssystem, der styrer rykningsmotilitet (18). Samlet set antyder disse resultater, at ekspression eller funktion af celleoverfladevedhæng, der påvirker biofilmdannelse, ændres under anaerob vækst. Sådanne ændringer kan bidrage til den øgede biofilmdannelse observeret for P. aeruginosa voksende anaerobt (20).

ud over de ændringer i ydre membranproteiner, der blev observeret under anaerob vækst, viste ICAT-analyse, at flere involverede i biosyntesen af P. aeruginosa lipopolysaccharid (LPS) blev udtrykt ved højere niveauer under anaerob vækst (tabel (Table1).1). Disse omfattede en homolog af beta-hydroksylase Lpkso2, som hydroksylaser lipid a fedtsyrer (14); LPS kerne heptosyltransferaser Vac og Vaf (2, 15); og Hbpg, som er kodet af en genklynge, der deltager i syntesen af et langt B-band O-antigen. Disse resultater antyder, at LPS-indhold kan ændres som en konsekvens af anaerobiose.

sammenfattende ændres P. aeruginosa-proteomet markant under anaerob vækst. Vi identificerede i alt 617 proteiner: 610 ved ICAT-analyse, 4 ved SDS-SIDEANALYSE og 3 ved 2D-sideanalyse. Af de 617 identificerede proteiner varierede overfloden af 158 mellem anaerobt dyrkede og aerobt dyrkede celler. Fordi P. aeruginosa nåede en lavere celletæthed under vores anaerobe vækstbetingelser end under aerobe vækstbetingelser, kan densitetsafhængige ændringer i proteinekspression have bidraget til proteomet, som vi opdagede under anaerob vækst. Ikke desto mindre er bakteriecelletætheden sandsynligvis på samme måde begrænset i mange miljømæssige nicher, hvor flere næringsstoffer (inklusive ilt) er knappe. Derfor bidrager ændringerne i proteinniveauer, som vi har opdaget, til en forståelse af, hvordan bakteriens proteom og metaboliske tilstand varierer som reaktion på forskellige miljøer. Direkte analyse af bakterieproteinindhold er en robust teknologi til at observere tilpasning af bakterier til specifikke miljømæssige nicher, herunder CF-luftvejene.

Skriv et svar

Din e-mailadresse vil ikke blive publiceret.

More: