PMC

Pseudomonas aeruginosa Er en allestedsnærværende miljøgramnegativ bakterie som finnes i jord og vann. Det er også et opportunistisk patogen som forårsaker infeksjoner hos personer med medfødte immundefekter, inkludert pasienter med cystisk fibrose (cf) (8). P. aeruginosa møter lav-oksygen miljøer i jord og vann. Bevis tyder på at hos mennesker med CF kan bakterier, i det minste delvis, være i et miljø med lavt oksygeninnhold i mucopurulente masser eller biofilmer i luftveiene (19). P. aeruginosa er i stand til å vokse anaerobt i nærvær av terminale elektronacceptorer, som nitrat (NO3 -−, nitritt (NO2 -) og nitrogenoksid (N2O), eller når l-arginin er et substrat for vekst (21). CF luftveis slim er tilstrekkelig rik PÅ NO3 – OG NO2-for å støtte den anaerobe veksten Av P. aeruginosa (7, 19). I denne studien ble det utført en sammenligning Av P. aeruginosa-proteomet under vekst i nærvær og fravær av oksygen.

S. aeruginosa stamme PAO1 hentet Fra Steve Lory (Harvard Medical School, Boston, MA) ble dyrket i 125 ml flasker I Luria buljong (LB) supplert med 1% KNO3 med risting ved 200 rpm ved 37°C For aerob vekst. Anaerob vekst ble fullført som tidligere beskrevet (9) i 80 ml medium i 100 ml Wheaton-serumflasker (Fisher Scientific) med gummipropper. Mediet ble fratatt oksygen ved å bli utsatt for boblende med n2 gass for 1 h. For både aerobe og anaerobe forhold ble bakterier høstet i den sene logaritmiske vekstfasen, hvor celletettheten (optisk tetthet ved 600 nm) av den anaerobe kulturen var 44% av tettheten av den aerobe kulturen. Det var ingen signifikant forskjell mellom pHs av høstede kulturer (pH 7,6 for anaerob kultur og pH 7,4 for aerob kultur). Like mengder denaturert og redusert helcelleprotein (2.0 mg fra hver veksttilstand) ble merket med enten lett (12c) eller tung (13C) spaltbar isotopkodet affinitetsmerke (ICAT) reagens (Applied Biosystems, Foster City, CA), behandlet og analysert som tidligere beskrevet (3). De rapporterte dataene er gjennomsnittet av minst to uavhengige eksperimenter.

Seks hundre ti p. aeruginosa proteiner ble identifisert og kvantifisert VED HJELP AV ICAT(for en fullstendig liste over proteiner, se Tabell S1 i supplerende materiale). Blant 151 proteiner hvis overflod endret seg under anaerob vekst, var 76 høyere i overflod (Tabell (Tabell 1) 1) og 75 var lavere i overflod (Tabell (Tabell 2).2). Som forventet ble 13 proteiner som deltar i anaerob vekst og denitrifisering (inkludert produkter av nir, nos og nar-gener) uttrykt ved høyere nivåer under anaerob vekst (Tabell (Tabell 1).1). Disse resultatene tyder på at de observerte endringene i proteininnholdet inkluderer de som skyldes vekst på forskjellige oksygenivåer.

TABELL 1.

S. aeruginosa proteiner med økt overflod under anaerob vekst

Genea Protein gennavn nb Ratioc SD
PA0025* Shikimatdehydrogenase aroE 3 1.79 0.04
PA0130 Sannsynlig aldehyd dehydrogenase 10 2.28 0.22
PA0132 Beta-alanine-pyruvate transaminase 10 1.64 0.31
PA0286 Probable fatty acid desaturase 5 4.61 0.42
PA0300 Polyamine transport protein spuD 7 1.65 0.17
PA0321 Probable acetylpolyamine aminohydrolase 1 1.91 NAd
PA0336 Nudix hydrolase YgdP ygdP 13 1.54 0.40
PA0396 Rykninger motilitet protein PilU pilU 8 1.88 0.25
PA0408 Rykninger motilitet protein PilG pilG 2 1.63 0.10
PA0413 Komponent av signaltransduksjonssystem chpA 12 2.10 0.35
PA0520 Regulatory protein NirQ nirQ 59 2.21 0.33
PA0655 Hypothetical protein 34 2.63 0.41
PA0658 Probable short-chain dehydrogenase 1 1.96 NA
PA0844 Hemolytic phospholipase C precursor plcH 1 1.72 NA
PA0867 Hypothetical protein 4 2.33 0.12
PA0934 GTP pyrophosphokinase relA 6 1.70 0.08
PA0936 LPS biosynthetic protein LpxO2 lpxO2 14 2.17 0.35
PA1155 Ribonucleoside reductase, small chain nrdB 3 12.15 5.64
PA1156 Ribonucleoside reductase, large chain nrdA 4 3.57 1.37
PA1398 Hypothetical protein 1 1.56 NA
PA1566 Conserved hypothetical protein 3 3.12 0.58
PA1681 Chorismate synthase aroC 5 1.65 0.14
PA1766 Hypotetisk protein 3 1.60 0.13
PA1847 Konservert hypotetisk protein 1 1.88 NA
PA1919 Sannsynlig radikal-aktiverende enzym 5 7.34 0.98
PA1920 Konservert hypotetisk protein 15 10.80 5.21
PA2119 Alcohol dehydrogenase (Zn dependent) 25 1.84 0.22
PA2127 Conserved hypothetical protein 6 2.46 0.12
PA2323 Probable glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase 2 1.95 NA
PA2567 Hypothetical protein 1 1.54 NA
PA2945 Conserved hypothetical protein 2 2.36 0.30
PA2991 Soluble pyridine nucleotide transhydrogenase sth 20 1.93 0.37
PA2994 NA+-translocating NADH:quinone oxidoreductase nqrF 15 1.60 0.27
PA2999* NA+-translocating NADH:ubiquinone oxidoreductase nqrA 5 1.74 0.11
PA3002 Transcription-repair coupling protein Mfd mfd 2 1.52 0.06
PA3150 LPS biosynthesis protein WbpG wbpG 1 3.72 NA
PA3185 Hypothetical protein 4 1.82 0.08
PA3391 Regulatory protein NosR nosR 5 7.75 0.98
PA3392 Nitrous oxide reductase precursor nosZ 69 3.65 0.72
PA3394 NosF protein nosF 9 4.09 0.46
PA3438 GTP cyclohydrolase I precursor folEI 1 5.58 NA
PA3515 Hypothetical protein 1 4.21 NA
PA3562* Probable phosphotransferase system enzyme I 3 2.91 0.17
PA3694 Hypothetical protein 4 1.92 0.07
PA3871 Probable peptidyl-prolyl cis-trans isomerase, PpiC type 3 2.50 0.64
PA3873 Respiratory nitrate reductase delta chain narJ 1 3.20 NA
PA3874 beta-kjede Av respiratorisk nitratreduktase narH 67 7.89 2.83
PA3875 respiratorisk nitratreduktase alfa-kjede narG 35 7.70 3.23
PA3880 Konservert hypotetisk protein 8 3.88 0.98
PA3886 Hypotetisk protein 1 7.25 NA
PA3895 Probable transcriptional regulator 2 1.49 0.00
PA3913 Probable protease 1 5.30 NA
PA3914* Molybdenum cofactor biosynthetic protein A1 moeA1 21 3.41 0.63
PA3915* Molybdopterin biosynthetic protein B1 moaB1 5 4.40 0.72
PA3918* Molybdopterin biosynthetic protein C moaC 23 1.88 0.41
PA3958 Hypothetical protein 1 2.29 NA
PA4180 Probable acetolactate synthase large subunit 2 2.16 0.53
PA4811 Nitrate-inducible formate dehydrogenase, beta subunit fdnH 3 5.85 1.85
PA4812 Format dehydrogenase-O, hovedenhet fdnG 4 3.46 0.64
PA4868 Urease alfa-underenhet ureC 1 1.51 NA
PA4922 azurinforløper azu 4 2.96 0.81
PA5005 Sannsynlig karbamoyltransferase 42 1.59 0.24
PA5011 Heptosyltransferase til waaC 4 1.49 0.17
PA5012 Heptosyltransferase II waaF 6 1.45 0.11
PA5015 Pyruvat dehydrogenase aceE 111 1.98 0.42
PA5064 Hypotetisk protein 1 1.93 NA
PA5223 UbiH protein ubiH 3 1.67 0.10
PA5296 ATP-dependent DNA helicase Rep rep 2 1.77 0.00
PA5300 Cytochrome c5 cycB 13 1.91 0.21
PA5332 Catabolite repression control protein crc 3 1.90 0.21
PA5440 Probable peptidase 1 18.54 NA
PA5496* Hypothetical protein 8 6.46 2.07
PA5497* Hypothetical protein 10 11.28 3.17
PA5508 Probable glutamine synthetase 11 2.73 0.26
PA5564 Glukose hemmet divisjon protein b gidB 2 1.53 0.02
agener merket med stjerne ( * ) ble identifisert som up-regulert under anaerob vekst (1).
bantall peptider identifisert og kvantifisert for hvert protein.
cValues representerer relativ protein overflod, eller forholdet mellom protein uttrykk i celler dyrket anaerobt til protein uttrykk i celler dyrket aerobically.
dNA, ikke anvendelig.

TABELL 2.

p. aeruginosa proteiner med redusert overflod under anaerob vekst

Genea Proteine gennavn nb Ratioc SD
PA0085 Konservert hypotetisk protein 3 2.15 0.26
PA0100 Hypotetisk protein 1 1.53 NAd
PA0128 Conserved hypothetical protein 9 2.10 0.35
PA0139 Alkyl hydroperoxide reductase subunit C ahpC 655 2.50 1.29
PA0195 Still frameshift pyridine nucleotide transhydrogenase pntA 10 2.21 0.55
PA0399 Cystathionine beta-synthase 6 3.39 0.52
PA0447* Glutaryl-CoA dehydrogenase gcdH 24 5.30 1.04
PA0534 Conserved hypothetical protein 4 5.46 1.51
PA0588 Conserved hypothetical protein 78 5.56 2.52
PA0746 Probable acyl-CoA dehydrogenase 2 2.52 0.51
PA0853 Probable oxidoreductase 16 2.19 0.30
PA0854 Fumarate hydratase fumC2 9 2.36 0.34
PA0870 Aromatic amino acid aminotransferase phhC 24 1.74 0.22
PA0871 Pterin-4-alpha-carbinolamine dehydratase phhB 27 2.37 0.57
PA0872 Phenylalanine-4-hydroxylase phhA 60 2.11 0.65
PA0916 Conserved hypothetical protein 6 1.93 0.28
PA0997* Quinolone signal biosynthesis protein pqsB 3 15.54 6.73
PA0998* Quinolone signal biosynthesis protein pqsC 5 9.11 3.39
PA0999* 3-Oxoacyl- synthase III pqsD 12 5.62 1.50
PA1002* Anthranilate synthase component II phnB 1 2.30 NA
PA1228 Hypothetical protein 13 2.55 0.52
PA1529 DNA ligase lig 21 2.50 0.33
PA1574 Conserved hypothetical protein 1 2.25 NA
PA1662 Probable ClpA/B-type protease 2 2.65 0.27
PA1756 3′-Phosphoadenosine-5′-phosphosulfate reductase cysH 3 2.89 0.13
PA1772 Probable methyltransferase 4 2.34 0.43
PA1894 Hypothetical protein 9 2.48 0.94
PA1964 Probable ATP-binding component of ABC transporter 1 1.00 NA
PA2001 Acetyl-CoA acetyltransferase atoB 149 1.74 1.11
PA2007 Maleylacetoacetate isomerase maiA 10 2.45 0.47
PA2008 Fomarylacetaacetase fahA 47 11.02 4.75
PA2009 Homogentisat 1,2-dioksygenase hmgA 4 20.39 11.50
PA2012* Sannsynlig acyl-CoA karboksylase alfa kjede 7 2.24 0.19
PA2014 * Sannsynlig acl-CoA karboksyltransferase beta kjede 69 2.14 0.44
PA2044 Hypothetical protein 4 3.49 0.24
PA2069 Probable carbamoyl transferase 10 4.11 1.13
PA2081 Hypothetical protein 4 2.25 0.12
PA2112* Conserved hypothetical protein 28 3.94 0.90
PA2116 Conserved hypothetical protein 35 3.67 0.97
PA2194 Hydrogen cyanide synthase HcnB hcnB 9 3.26 0.50
PA2195 Hydrogen cyanide synthase HcnC hcnC 3 4.11 0.15
PA2247 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (alpha subunit) bkdA1 7 3.54 1.00
PA2248 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (beta subunit) bkdA2 59 2.80 1.07
PA2250 Lipoamide dehydrogenase Val lpdV 18 2.79 0.59
PA2366* Conserved hypothetical protein 1 2.70 NA
PA2552* Probable acyl-CoA dehydrogenase 13 1.99 0.70
PA2553* Probable acyl-CoA thiolase 48 2.17 0.50
PA2555* Probable AMP-binding enzyme 10 2.22 0.56
PA2850 Organic hydroperoxide resistance protein ohr 6 2.26 0.37
PA2939 Probable aminopeptidase 3 2.67 0.80
PA2981 Tetraacyldisaccharide 4′-kinase lpxK 1 13.49 NA
PA3049 Ribosome modulation factor rmf 15 3.84 0.92
PA3195 Glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase gapA 1 2.76 NA
PA3327 Probable nonribosomal peptide synthetase 1 2.16 NA
PA3328 Probable FAD-dependent monooxygenase 6 4.58 1.28
PA3329* Hypothetical protein 1 2.08 NA
PA3331 Cytochrome P450 17 5.10 2.00
PA3347 Hypothetical protein 4 1.96 0.20
PA3365 Probable chaperone 1 2.35 NA
PA3366 Aliphatic amidase amiE 1 2.00 NA
PA3481 Conserved hypothetical protein 1 1.54 NA
PA3537 Ornithine carbamoyltransferase, anabolic argF 1 5.57 NA
PA3569 3-Hydroxyisobutyrate dehydrogenase mmsB 25 3.67 0.94
PA3570 Methylmalonate-semialdehyde dehydrogenase mmsA 1 3.17 NA
PA3842 Probable chaperone 8 3.17 1.44
PA3919* Conserved hypothetical protein 7 2.19 0.36
PA4015 Conserved hypothetical protein 11 2.11 0.67
PA4129* Hypothetical protein 3 3.75 1.17
PA4132 Conserved hypothetical protein 6 2.36 1.11
PA4217 Flavin-containing monooxygenase phzS 5 5.09 1.26
PA4362 Hypotetisk protein 2 2.17 0.29
PA4412 * MurG protein murG 1 3.28 NA
PA4498 Sannsynlig metallopeptidase 4 2.00 0.06
PA5100 Urokanase hutU 10 4.50 1.23
PA5410 Sannsynlig ringhydroksylerende dioksygenase, alfa-underenhet 1 2.76 NA
agener merket med stjerne ( * ) ble identifisert som nedregulert under anaerob vekst (1).
bantall peptider identifisert og kvantifisert for hvert protein.
cValues representerer relativ protein overflod, eller forholdet mellom protein uttrykk i celler dyrket aerobically til protein uttrykk i celler dyrket anaerobt.
dNA, ikke anvendelig.
eCoA, koenzym A; FAD, flavinadenindinukleotid.

endringene i det oppdagede proteomet kan også gjenspeile forskjeller i all tetthetsavhengig regulering i tillegg til effekter av oksygenspenning, gitt den lavere relative celletettheten av den høstede anaerobe kulturen. Faktisk er 29 proteiner oppdaget i lavere overflod i anaerobt dyrkede celler kodet av gener som tidligere viste seg å være quorum sensing indusert (5, 16, 17). Disse inkluderer hydrogencyanidsyntase-underenhetene HcnB og HcnC; Pseudomonas kinolon signal biosyntetiske enzymer PqsB, PqsC og PqsD; Og PhnB (Tabell (Table2).2). I samsvar med våre resultater ble hcn-og pqs-gener også funnet å være transkripsjonelt undertrykt under anaerob vekst ved en nylig DNA-mikroarray-analyse ved bruk av aerobe og anaerobe kulturer høstet ved samme celletetthet (1) (Tabell (Tabell22).

for å identifisere utskilt P. aeruginosa-proteiner med endrede nivåer under anaerob vekst ble kultur supernatante proteiner konsentrert (11) og separert av natriumdodecylsulfat-polyakrylamidgelelektroforese (Sds-PAGE) (Fig. (Fig.1).1). Fire Coomassie-farget protein band, tilsvarende differensielt uttrykte proteiner, ble identifisert og analysert som i en tidligere studie (4) (Fig. (Fig.1).1). Overflodene av tre utskillede proteiner syntes å synke under anaerob vekst: CbpD-kitinbindende protein, LasB elastase og et protein med ukjent funksjon kodet AV PA0572. Tidligere proteomiske studier fant at alle tre av disse proteinene er quorum sensing indusert (11). Et protein syntes å være økt i overflod under anaerob vekst og ble identifisert som enten flagellarfilamentproteinet FliC eller flagellar capping protein FliD (på grunn av overlappingen i egenskapene til disse to proteinene).

p. aeruginosa utskilles proteiner uttrykt under anaerob vekst. P. aeruginosa kultur supernatant proteiner ble separert med 12% SDS-SIDE og oppdaget ved farging Med Coomassie. Proteiner som endret seg i overflod under anaerob vekst (i forhold til aerob vekst) er merket. – O2, anaerob vekst; + O2, aerob vekst.

de fleste p. aeruginosa ytre membranproteiner inneholder ikke cysteinrester og kan derfor ikke analyseres MED ICAT (4). Derfor ble todimensjonal (2D) SIDE brukt som en komplementær metode (4). Flere ytre membranproteiner (Fig. (Fig.2) 2) ble skåret ut FRA 2d gel og identifisert (4). OprE syntes å øke i overflod under anaerob vekst, Mens OprF og OprH syntes å redusere i overflod (Fig. (Fig.2).2). Alle tre proteinene migrerte som flere arter under isoelektrisk fokusering (Fig. (Fig.2).2). Redusert overflod av OprF under anaerob vekst ble bekreftet ved immunoblotting av ytre membranproteiner (data ikke vist) ved bruk av et polyklonal anti-OprF antiserum (en gave Fra Robert Hancock, University Of British Columbia I Vancouver, Canada).

p. aeruginosa ytre membranproteiner uttrykt under anaerob vekst. Ytre membranproteiner ble separert med 12% 2D-SIDE og detektert ved farging Med Coomassie. Proteiner ble separert i den første dimensjonen ved isoelektrisk fokusering (IEF) ved pI-områder på 4 til 7 (A) og 6 til 11 (B). Proteiner som endret seg i overflod under anaerob vekst (i forhold til aerob vekst) er merket med piler. – O2, anaerob vekst; + O2, aerob vekst.

Blant p. aeruginosa-proteinene som viste økt overflod under anaerob vekst (Tabell (Tabell 1; 1; Fig. Fig.1), 1), flere bidrar til funksjoner involvert i dannelse og utvikling av biofilmer. Disse proteinene inkluderer katabolitt undertrykkelse kontroll protein Crc og rykninger motilitet proteiner PilU, PilG, Og ChpA (12, 13, 18). I samsvar med et økt Nivå Av Crc i anaerobt dyrkede celler (Tabell (Tabell1),1), ble kjente mål for Crc-undertrykkelse redusert i overflod (Tabell (Tabell2), 2), inkludert hmgA-og bkd-genproduktene (6, 10). ChpA og PilG er komponenter i et komplekst reguleringssystem som kontrollerer rykningsmotilitet (18). Samlet sett tyder disse resultatene på at uttrykk eller funksjon av celleoverflatetilheng som påvirker biofilmdannelse, endres under anaerob vekst. Slike endringer kan bidra til økt biofilmdannelse observert for p. aeruginosa som vokser anaerobt (20).

I tillegg til endringene i ytre membranproteiner observert under anaerob vekst, VISTE ICAT-analyse at flere enzymer involvert I biosyntese Av P. aeruginosa lipopolysakkarid (LPS) ble uttrykt ved høyere nivåer under anaerob vekst (Tabell (Tabell 1).1). Disse inkluderte en homolog av beta-hydroksylase LpxO2, som hydroksylater lipid a-fettsyrer (14); lps kjerne heptosyltransferaser WaaC Og WaaF (2, 15); Og WbpG, som er kodet av en genklynge som deltar i syntesen av et langt b-band O-antigen. Disse resultatene tyder på AT LPS-innholdet kan endres som følge av anaerobiose.

oppsummert endres P. aeruginosa proteomet betydelig under anaerob vekst. Vi identifiserte 617 proteiner totalt: 610 VED ICAT-analyse, 4 ved sds-SIDEANALYSE og 3 ved 2d-sideanalyse. Av de 617 identifiserte proteinene varierte overflodene av 158 mellom anaerobt dyrkede og aerobisk dyrkede celler. Fordi p. aeruginosa nådde en lavere celletetthet under våre anaerobe vekstforhold enn under aerobe vekstforhold, kan tetthetsavhengige endringer i proteinuttrykk ha bidratt til proteomet som vi oppdaget under anaerob vekst. Likevel er bakteriell celletetthet sannsynligvis begrenset i mange miljønicher hvor flere næringsstoffer (inkludert oksygen) er knappe. Derfor bidrar endringene i proteinnivåer som vi har oppdaget til en forståelse av hvordan proteom og metabolsk tilstand av bakterier varierer i respons til forskjellige miljøer. Direkte analyse av bakterielt proteininnhold er en robust teknologi for å observere tilpasning av bakterier til spesifikke miljønicher, inkludert CF-luftveien.

Legg igjen en kommentar

Din e-postadresse vil ikke bli publisert.

More: