PMC

Pseudomonas aeruginosa är en allestädes närvarande miljögramnegativ bakterie som finns i jord och vatten. Det är också en opportunistisk patogen som orsakar infektioner hos individer med medfödda immundefekter, inklusive patienter med cystisk fibros (CF) (8). P. aeruginosa möter miljöer med låg syre i jord och vatten. Bevis tyder på att hos människor med CF kan bakterier åtminstone delvis vara i en syrefattig miljö inom mucopurulenta massor eller biofilmer i luftvägarna (19). P. aeruginosa kan växa anaerobt i närvaro av terminala elektronacceptorer, såsom nitrat (NO3−), nitrit (NO2−) och kväveoxid (N2O), eller när l-arginin är ett substrat för tillväxt (21). CF-luftvägsslem är tillräckligt rik på NO3 – och NO2− för att stödja den anaeroba tillväxten av P. aeruginosa (7, 19). I denna studie utfördes en jämförelse av P. aeruginosa-proteomen under tillväxt i närvaro och frånvaro av syre.

P. aeruginosa stam PAO1 erhållen från Steve Lory (Harvard Medical School, Boston, MA) odlades i 125 ml kolvar i Luria broth (LB) kompletterad med 1% KNO3 med skakning vid 200 rpm vid 37 kcal C för aerob tillväxt. Anaerob tillväxt slutfördes som tidigare beskrivits (9) i 80 ml medium i 100 ml Wheaton serumflaskor (Fisher Scientific) med gummiproppar. Mediet berövades syre genom att utsättas för bubbling med N2-gas under 1 h. För både aeroba och anaeroba förhållanden skördades bakterier vid den sena logaritmiska tillväxtfasen, vid vilken punkt celldensiteten (optisk densitet vid 600 nm) av den anaeroba kulturen var 44% av densiteten hos den aeroba kulturen. Det fanns ingen signifikant skillnad mellan pHs för de skördade kulturerna (pH 7,6 för den anaeroba kulturen och pH 7,4 för den aeroba kulturen). Lika stora mängder denaturerat och reducerat helcellsprotein (2.0 mg från varje tillväxttillstånd) märktes med antingen lätt (12c) eller tungt (13C) klyvbart isotopkodat affinity tag (ICAT) reagens (Applied Biosystems, Foster City, CA), bearbetat och analyserat som tidigare beskrivet (3). De rapporterade uppgifterna är medelvärdena för minst två oberoende experiment.

sex hundra tio P. aeruginosa-proteiner identifierades och kvantifierades med användning av ICAT (för en fullständig lista över proteiner, se tabell S1 i tilläggsmaterialet). Bland 151 proteiner vars överflöd förändrades under anaerob tillväxt var 76 högre i överflöd (tabell (Tabell1)1) och 75 var lägre i överflöd (tabell (Tabell2).2). Som förväntat uttrycktes 13 proteiner som deltar i anaerob tillväxt och denitrifikation (inklusive produkter av Nir -, nos-och nar-gener) vid högre nivåer under anaerob tillväxt (tabell (Tabell1).1). Dessa resultat tyder på att de observerade förändringarna i proteininnehållet inkluderar de som specifikt härrör från tillväxt vid olika syrenivåer.

tabell 1.

P. aeruginosa proteiner med ökad överflöd under anaerob tillväxt

Genea Protein gennamn Obs Ratioc SD
PA0025 * Shikimatdehydrogenas aroE 3 1.79 0.04
PA0130 sannolikt aldehyddehydrogenas 10 2.28 0.22
PA0132 Beta-alanine-pyruvate transaminase 10 1.64 0.31
PA0286 Probable fatty acid desaturase 5 4.61 0.42
PA0300 Polyamine transport protein spuD 7 1.65 0.17
PA0321 Probable acetylpolyamine aminohydrolase 1 1.91 NAd
PA0336 Nudix hydrolas YgdP ygdP 13 1.54 0.40
PA0396 ryckningar motilitet protein PilU pilU 8 1.88 0.25
PA0408 ryckningar motilitet protein PilG pilG 2 1.63 0.10
PA0413 komponent i signaltransduktionssystemet chpA 12 2.10 0.35
PA0520 Regulatory protein NirQ nirQ 59 2.21 0.33
PA0655 Hypothetical protein 34 2.63 0.41
PA0658 Probable short-chain dehydrogenase 1 1.96 NA
PA0844 Hemolytic phospholipase C precursor plcH 1 1.72 NA
PA0867 Hypothetical protein 4 2.33 0.12
PA0934 GTP pyrophosphokinase relA 6 1.70 0.08
PA0936 LPS biosynthetic protein LpxO2 lpxO2 14 2.17 0.35
PA1155 Ribonucleoside reductase, small chain nrdB 3 12.15 5.64
PA1156 Ribonucleoside reductase, large chain nrdA 4 3.57 1.37
PA1398 Hypothetical protein 1 1.56 NA
PA1566 Conserved hypothetical protein 3 3.12 0.58
PA1681 Chorismate synthase aroC 5 1.65 0.14
PA1766 hypotetiskt protein 3 1.60 0.13
PA1847 konserverat hypotetiskt protein 1 1.88 NA
PA1919 sannolikt radikalaktiverande enzym 5 7.34 0.98
PA1920 konserverat hypotetiskt protein 15 10.80 5.21
PA2119 Alcohol dehydrogenase (Zn dependent) 25 1.84 0.22
PA2127 Conserved hypothetical protein 6 2.46 0.12
PA2323 Probable glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase 2 1.95 NA
PA2567 Hypothetical protein 1 1.54 NA
PA2945 Conserved hypothetical protein 2 2.36 0.30
PA2991 Soluble pyridine nucleotide transhydrogenase sth 20 1.93 0.37
PA2994 NA+-translocating NADH:quinone oxidoreductase nqrF 15 1.60 0.27
PA2999* NA+-translocating NADH:ubiquinone oxidoreductase nqrA 5 1.74 0.11
PA3002 Transcription-repair coupling protein Mfd mfd 2 1.52 0.06
PA3150 LPS biosynthesis protein WbpG wbpG 1 3.72 NA
PA3185 Hypothetical protein 4 1.82 0.08
PA3391 Regulatory protein NosR nosR 5 7.75 0.98
PA3392 Nitrous oxide reductase precursor nosZ 69 3.65 0.72
PA3394 NosF protein nosF 9 4.09 0.46
PA3438 GTP cyclohydrolase I precursor folEI 1 5.58 NA
PA3515 Hypothetical protein 1 4.21 NA
PA3562* Probable phosphotransferase system enzyme I 3 2.91 0.17
PA3694 Hypothetical protein 4 1.92 0.07
PA3871 Probable peptidyl-prolyl cis-trans isomerase, PpiC type 3 2.50 0.64
PA3873 Respiratory nitrate reductase delta chain narJ 1 3.20 NA
PA3874 respiratorisk nitratreduktas beta kedja narH 67 7.89 2.83
PA3875 respiratorisk nitratreduktas alfa kedja narG 35 7.70 3.23
PA3880 konserverat hypotetiskt protein 8 3.88 0.98
PA3886 hypotetiskt protein 1 7.25 NA
PA3895 Probable transcriptional regulator 2 1.49 0.00
PA3913 Probable protease 1 5.30 NA
PA3914* Molybdenum cofactor biosynthetic protein A1 moeA1 21 3.41 0.63
PA3915* Molybdopterin biosynthetic protein B1 moaB1 5 4.40 0.72
PA3918* Molybdopterin biosynthetic protein C moaC 23 1.88 0.41
PA3958 Hypothetical protein 1 2.29 NA
PA4180 Probable acetolactate synthase large subunit 2 2.16 0.53
PA4811 Nitrate-inducible formate dehydrogenase, beta subunit fdnH 3 5.85 1.85
PA4812 Formiatdehydrogenas-O, större underenhet fdnG 4 3.46 0.64
PA4868 ureas alfa-subenhet ureC 1 1.51 NA
PA4922 Azurin prekursor azu 4 2.96 0.81
PA5005 sannolikt karbamoyltransferas 42 1.59 0.24
PA5011 Heptosyltransferas till waaC 4 1.49 0.17
PA5012 Heptosyltransferas II waaF 6 1.45 0.11
PA5015 Pyruvatdehydrogenas aceE 111 1.98 0.42
PA5064 hypotetiskt protein 1 1.93 NA
PA5223 UbiH protein ubiH 3 1.67 0.10
PA5296 ATP-dependent DNA helicase Rep rep 2 1.77 0.00
PA5300 Cytochrome c5 cycB 13 1.91 0.21
PA5332 Catabolite repression control protein crc 3 1.90 0.21
PA5440 Probable peptidase 1 18.54 NA
PA5496* Hypothetical protein 8 6.46 2.07
PA5497* Hypothetical protein 10 11.28 3.17
PA5508 Probable glutamine synthetase 11 2.73 0.26
PA5564 Glukoshämt delningsprotein B gidB 2 1.53 0.02
agener markerade med en asterisk (*) identifierades som uppreglerade under anaerob tillväxt (1).
btal peptider identifierade och kvantifierade för varje protein.
cvärden representerar relativ proteinöverflöd, eller förhållandet mellan proteinuttryck i celler som odlas anaerobt och proteinuttryck i celler som odlas aerobt.
dNA, Ej tillämpligt.

tabell 2.

P. aeruginosa proteiner med minskad överflöd under anaerob tillväxt

Genea protein gennamn Obs Ratioc SD
PA0085 konserverat hypotetiskt protein 3 2.15 0.26
PA0100 hypotetiskt protein 1 1.53 NAd
PA0128 Conserved hypothetical protein 9 2.10 0.35
PA0139 Alkyl hydroperoxide reductase subunit C ahpC 655 2.50 1.29
PA0195 Still frameshift pyridine nucleotide transhydrogenase pntA 10 2.21 0.55
PA0399 Cystathionine beta-synthase 6 3.39 0.52
PA0447* Glutaryl-CoA dehydrogenase gcdH 24 5.30 1.04
PA0534 Conserved hypothetical protein 4 5.46 1.51
PA0588 Conserved hypothetical protein 78 5.56 2.52
PA0746 Probable acyl-CoA dehydrogenase 2 2.52 0.51
PA0853 Probable oxidoreductase 16 2.19 0.30
PA0854 Fumarate hydratase fumC2 9 2.36 0.34
PA0870 Aromatic amino acid aminotransferase phhC 24 1.74 0.22
PA0871 Pterin-4-alpha-carbinolamine dehydratase phhB 27 2.37 0.57
PA0872 Phenylalanine-4-hydroxylase phhA 60 2.11 0.65
PA0916 Conserved hypothetical protein 6 1.93 0.28
PA0997* Quinolone signal biosynthesis protein pqsB 3 15.54 6.73
PA0998* Quinolone signal biosynthesis protein pqsC 5 9.11 3.39
PA0999* 3-Oxoacyl- synthase III pqsD 12 5.62 1.50
PA1002* Anthranilate synthase component II phnB 1 2.30 NA
PA1228 Hypothetical protein 13 2.55 0.52
PA1529 DNA ligase lig 21 2.50 0.33
PA1574 Conserved hypothetical protein 1 2.25 NA
PA1662 Probable ClpA/B-type protease 2 2.65 0.27
PA1756 3′-Phosphoadenosine-5′-phosphosulfate reductase cysH 3 2.89 0.13
PA1772 Probable methyltransferase 4 2.34 0.43
PA1894 Hypothetical protein 9 2.48 0.94
PA1964 Probable ATP-binding component of ABC transporter 1 1.00 NA
PA2001 Acetyl-CoA acetyltransferase atoB 149 1.74 1.11
PA2007 Maleylacetoacetate isomerase maiA 10 2.45 0.47
PA2008 Fomarylacetaacetas fahA 47 11.02 4.75
PA2009 Homogentisat 1,2-dioxygenas hmgA 4 20.39 11.50
PA2012 * sannolik acyl-CoA-karboxylas alfa-kedja 7 2.24 0.19
PA2014 * sannolik ACL-CoA-karboxyltransferas beta-kedja 69 2.14 0.44
PA2044 Hypothetical protein 4 3.49 0.24
PA2069 Probable carbamoyl transferase 10 4.11 1.13
PA2081 Hypothetical protein 4 2.25 0.12
PA2112* Conserved hypothetical protein 28 3.94 0.90
PA2116 Conserved hypothetical protein 35 3.67 0.97
PA2194 Hydrogen cyanide synthase HcnB hcnB 9 3.26 0.50
PA2195 Hydrogen cyanide synthase HcnC hcnC 3 4.11 0.15
PA2247 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (alpha subunit) bkdA1 7 3.54 1.00
PA2248 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (beta subunit) bkdA2 59 2.80 1.07
PA2250 Lipoamide dehydrogenase Val lpdV 18 2.79 0.59
PA2366* Conserved hypothetical protein 1 2.70 NA
PA2552* Probable acyl-CoA dehydrogenase 13 1.99 0.70
PA2553* Probable acyl-CoA thiolase 48 2.17 0.50
PA2555* Probable AMP-binding enzyme 10 2.22 0.56
PA2850 Organic hydroperoxide resistance protein ohr 6 2.26 0.37
PA2939 Probable aminopeptidase 3 2.67 0.80
PA2981 Tetraacyldisaccharide 4′-kinase lpxK 1 13.49 NA
PA3049 Ribosome modulation factor rmf 15 3.84 0.92
PA3195 Glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase gapA 1 2.76 NA
PA3327 Probable nonribosomal peptide synthetase 1 2.16 NA
PA3328 Probable FAD-dependent monooxygenase 6 4.58 1.28
PA3329* Hypothetical protein 1 2.08 NA
PA3331 Cytochrome P450 17 5.10 2.00
PA3347 Hypothetical protein 4 1.96 0.20
PA3365 Probable chaperone 1 2.35 NA
PA3366 Aliphatic amidase amiE 1 2.00 NA
PA3481 Conserved hypothetical protein 1 1.54 NA
PA3537 Ornithine carbamoyltransferase, anabolic argF 1 5.57 NA
PA3569 3-Hydroxyisobutyrate dehydrogenase mmsB 25 3.67 0.94
PA3570 Methylmalonate-semialdehyde dehydrogenase mmsA 1 3.17 NA
PA3842 Probable chaperone 8 3.17 1.44
PA3919* Conserved hypothetical protein 7 2.19 0.36
PA4015 Conserved hypothetical protein 11 2.11 0.67
PA4129* Hypothetical protein 3 3.75 1.17
PA4132 Conserved hypothetical protein 6 2.36 1.11
PA4217 Flavin-containing monooxygenase phzS 5 5.09 1.26
PA4362 hypotetiskt protein 2 2.17 0.29
PA4412 * MurG protein murG 1 3.28 NA
PA4498 sannolikt metallopeptidas 4 2.00 0.06
PA5100 Urokanas hutU 10 4.50 1.23
PA5410 sannolikt ringhydroxylerande dioxygenas, alfa-subenhet 1 2.76 NA
agener markerade med en asterisk (*) identifierades som nedreglerade under anaerob tillväxt (1).
btal peptider identifierade och kvantifierade för varje protein.
cvärden representerar relativ proteinöverflöd, eller förhållandet mellan proteinuttryck i celler som odlas aerobt till proteinuttryck i celler som odlas anaerobt.
dNA, Ej tillämpligt.
eCoA, koenzym A; FAD, flavinadenindinukleotid.

förändringarna i det detekterade proteomet kan också återspegla skillnader i all densitetsberoende reglering utöver effekterna av syrespänning, med tanke på den lägre relativa celldensiteten hos den skördade anaeroba kulturen. Faktum är att 29 proteiner som detekteras i lägre överflöd i anaerobt odlade celler kodas av gener som tidigare visat sig vara kvorumavkännande inducerad (5, 16, 17). Dessa inkluderar vätecyanidsyntasunderenheterna HcnB och HcnC; Pseudomonas kinolon signalerar biosyntetiska enzymer PqsB, PqsC och PqsD; och PhnB (tabell (Table2).2). I överensstämmelse med våra resultat befanns hcn-och pqs-gener också transkriberas under anaerob tillväxt genom en ny DNA-mikroarrayanalys med användning av aeroba och anaeroba kulturer skördade vid samma celldensitet (1) (Tabell (Tabell22).

för att identifiera utsöndrad P. aeruginosa-proteiner med förändrade nivåer under anaerob tillväxt koncentrerades supernatantproteiner för odling (11) och separerades med natriumdodecylsulfat-polyakrylamidgelelektrofores (SDS-PAGE) (Fig. (Fig.1).1). Fyra Coomassie-färgade proteinband, motsvarande differentiellt uttryckta proteiner, identifierades och analyserades som i en tidigare studie (4) (Fig. (Fig.1).1). Överflödet av tre utsöndrade proteiner tycktes minska under anaerob tillväxt: CbpD-kitinbindande protein, LasB elastas och ett protein med okänd funktion kodad av PA0572. Tidigare proteomiska studier visade att alla tre av dessa proteiner är kvorumavkännande inducerad (11). Ett protein verkade ökas i överflöd under anaerob tillväxt och identifierades som antingen flagellärt filamentprotein FliC eller flagellärt capping protein FliD (på grund av överlappningen i egenskaperna hos dessa två proteiner).

P. aeruginosa utsöndrade proteiner uttryckta under anaerob tillväxt. P. aeruginosa kultur supernatantproteiner separerades med 12% SDS-sida och detekterades genom färgning med Coomassie. Proteiner som förändrats i överflöd under anaerob tillväxt (i förhållande till aerob tillväxt) är märkta. – O2, anaerob tillväxt; + O2, aerob tillväxt.

de flesta P. aeruginosa yttre membranproteiner innehåller inte cysteinrester och kan därför inte analyseras med ICAT (4). Därför användes tvådimensionell (2D) sida som en komplementär Metod (4). Flera yttre membranproteiner (Fig. (Fig.2) 2) skars ut från 2D-gelen och identifierades (4). OprE verkade öka i överflöd under anaerob tillväxt, medan OprF och OprH tycktes minska i överflöd (Fig. (Fig.2).2). Alla tre proteinerna migrerade som flera arter under isoelektrisk fokusering (Fig. (Fig.2).2). Minskad överflöd av OprF under anaerob tillväxt bekräftades genom immunoblotting av yttre membranproteiner (data visas inte), med användning av ett polyklonalt anti-OprF-antiserum (en gåva från Robert Hancock, University of British Columbia i Vancouver, Kanada).

P. aeruginosa yttre membranproteiner uttryckta under anaerob tillväxt. Yttre membranproteiner separerades med 12% 2D-sida och detekterades genom färgning med Coomassie. Proteiner separerades i den första dimensionen genom isoelektrisk fokusering (IEF) vid pI-intervall av 4 till 7 (a) och 6 till 11 (B). Proteiner som förändrats i överflöd under anaerob tillväxt (i förhållande till aerob tillväxt) är märkta med pilar. – O2, anaerob tillväxt; + O2, aerob tillväxt.

bland P. aeruginosa-proteinerna som visade ökat överflöd under anaerob tillväxt (tabell (Tabell1;1; Fig. Fig.1), 1), Flera bidrar till funktioner som är involverade i bildandet och utvecklingen av biofilmer. Dessa proteiner inkluderar katabolit-repressionskontrollproteinet Crc och de ryckande motilitetsproteinerna PilU, PilG och ChpA (12, 13, 18). I överensstämmelse med en ökad nivå av Crc i anaerobt odlade celler (tabell (Tabell1),1) minskade kända mål för Crc-förtryck i överflöd (tabell (Tabell2), 2), inklusive hmga-och bkd-genprodukterna (6, 10). ChpA och PilG är komponenter i ett komplext regleringssystem som styr ryckningsmotilitet (18). Sammantaget tyder dessa resultat på att uttryck eller funktion av cellytans bilagor som påverkar biofilmbildning förändras under anaerob tillväxt. Sådana förändringar kan bidra till den ökade biofilmbildningen som observerats för P. aeruginosa som växer anaerobt (20).

förutom de förändringar i yttre membranproteiner som observerades under anaerob tillväxt visade ICAT-analys att flera enzymer involverade i biosyntesen av P. aeruginosa lipopolysackarid (LPS) uttrycktes vid högre nivåer under anaerob tillväxt (tabell (Tabell1).1). Dessa inkluderade en homolog av beta-hydroxylas LpxO2, som hydroxylaterar lipid A-fettsyror (14); LPS-kärnheptosyltransferaser WaaC och WaaF (2, 15); och WbpG, som kodas av ett genkluster som deltar i syntesen av ett långt B-band O-antigen. Dessa resultat tyder på att LPS-innehållet kan förändras som en följd av anaerobios.

Sammanfattningsvis förändras P. aeruginosa-proteomet signifikant under anaerob tillväxt. Vi identifierade 617 proteiner totalt: 610 genom ICAT-analys, 4 genom SDS-SIDANALYS och 3 genom 2D-sidanalys. Av de 617 identifierade proteinerna varierade överflödet av 158 mellan anaerobt odlade och aerobt odlade celler. Eftersom P. aeruginosa nådde en lägre celltäthet under våra anaeroba tillväxtförhållanden än under aeroba tillväxtförhållanden, kan densitetsberoende förändringar i proteinuttryck ha bidragit till proteomet som vi upptäckte under anaerob tillväxt. Ändå är bakteriell celldensitet sannolikt begränsad i många miljönischer där flera näringsämnen (inklusive syre) är knappa. Därför bidrar förändringarna i proteinnivåer som vi har upptäckt till en förståelse för hur proteom och metaboliskt tillstånd hos bakterier varierar som svar på olika miljöer. Direktanalys av bakterieproteininnehåll är en robust teknik för att observera anpassningen av bakterier till specifika miljönischer, inklusive CF-luftvägen.

Lämna ett svar

Din e-postadress kommer inte publiceras.

More: