PMC

a Pseudomonas aeruginosa mindenütt jelen lévő környezeti Gram-negatív baktérium, amely a talajban és a vízben található. Ez egy opportunista kórokozó is, amely fertőzéseket okoz veleszületett immunhibákban szenvedő egyénekben, beleértve a cisztás fibrózisban (CF) szenvedő betegeket (8). A P. aeruginosa alacsony oxigéntartalmú környezetben találkozik a talajban és a vízben. A bizonyítékok azt mutatják, hogy CF-ben szenvedő embereknél a baktériumok legalább részben alacsony oxigéntartalmú környezetben lehetnek mucopurulens tömegekben vagy biofilmekben a légutakban (19). P. az aeruginosa képes anaerob módon növekedni terminális elektron akceptorok, például nitrát (NO3−), nitrit (NO2−) és dinitrogén-oxid (N2O) jelenlétében, vagy ha az l-arginin a növekedés szubsztrátja (21). A CF légúti nyálka elég gazdag NO3− ban és NO2-ben, hogy támogassa a P. aeruginosa anaerob növekedését (7, 19). Ebben a vizsgálatban összehasonlították a P. aeruginosa proteomot a növekedés során oxigén jelenlétében és hiányában.

P. a Steve Lory-tól (Harvard Medical School, Boston, MA) nyert aeruginosa pao1 törzset 125 ml-es lombikokban termesztették Luria húslevesben (LB) kiegészítve 1% KNO-VAL3 rázással 200 fordulat / perc sebességgel, 37-nél 67cc az aerob növekedés érdekében. Az anaerob növekedést a korábban leírtak szerint fejeztük be (9) 80 ml táptalajban, 100 ml-es Wheaton szérumpalackokban (Fisher Scientific) gumidugókkal. A közeget oxigéntől megfosztottuk azáltal, hogy N2 gázzal 1 órán át buborékoltattuk. Mind aerob, mind anaerob körülmények között a baktériumokat a növekedés késői logaritmikus fázisában gyűjtöttük be, ekkor az anaerob tenyészet sejtsűrűsége (optikai sűrűség 600 nm-nél) az aerob tenyészet sűrűségének 44% – a volt. Nem volt szignifikáns különbség a betakarított tenyészetek pH-ja között (az anaerob tenyészet pH-ja 7,6, az aerob tenyészet pH-ja 7,4). Egyenlő mennyiségű denaturált és redukált egészsejtes fehérje (2.Minden növekedési állapotból 0 mg-ot) vagy könnyű (12C) vagy nehéz (13C) hasítható izotópkódolt affinitás tag (ICAT) reagenssel (Applied Biosystems, Foster City, CA) jelöltünk, feldolgoztuk és elemeztük a korábban leírtak szerint (3). A közölt adatok legalább két független kísérlet átlagai.

HATSZÁZTÍZ P. aeruginosa fehérjét azonosítottak és számszerűsítettek ICAT alkalmazásával (a fehérjék teljes listáját lásd a Kiegészítő anyag S1 táblázatában). A 151 fehérje közül, amelyek abundanciája megváltozott az anaerob növekedés során, 76 nagyobb volt a bőségben (táblázat (1.táblázat)1), 75 pedig alacsonyabb volt a bőségben (táblázat (2. táblázat).2). Ahogy az várható volt, az anaerob növekedésben és denitrifikációban részt vevő 13 fehérje (beleértve a nir, nos és nar gének termékeit) az anaerob növekedés során magasabb szinten expresszálódott (táblázat (1.táblázat).1). Ezek az eredmények arra utalnak, hogy a fehérjetartalom megfigyelt változásai közé tartoznak azok, amelyek kifejezetten a különböző oxigénszintek növekedéséből származnak.

1.táblázat.

P. az anaerob növekedés során megnövekedett mennyiségű aeruginosa fehérjék

Genea fehérje gén neve nb Ratioc SD
PA0025 * Sikimát-dehidrogenáz aroE 3 1.79 0.04
PA0130 valószínű aldehid-dehidrogenáz 10 2.28 0.22
PA0132 Beta-alanine-pyruvate transaminase 10 1.64 0.31
PA0286 Probable fatty acid desaturase 5 4.61 0.42
PA0300 Polyamine transport protein spuD 7 1.65 0.17
PA0321 Probable acetylpolyamine aminohydrolase 1 1.91 NAd
PA0336 Nudix hidroláz YgdP ygdP 13 1.54 0.40
PA0396 izomrángás motilitás fehérje PilU pilU 8 1.88 0.25
PA0408 izomrángás motilitás fehérje PilG pilG 2 1.63 0.10
PA0413 a jelátviteli rendszer alkotóeleme chpA 12 2.10 0.35
PA0520 Regulatory protein NirQ nirQ 59 2.21 0.33
PA0655 Hypothetical protein 34 2.63 0.41
PA0658 Probable short-chain dehydrogenase 1 1.96 NA
PA0844 Hemolytic phospholipase C precursor plcH 1 1.72 NA
PA0867 Hypothetical protein 4 2.33 0.12
PA0934 GTP pyrophosphokinase relA 6 1.70 0.08
PA0936 LPS biosynthetic protein LpxO2 lpxO2 14 2.17 0.35
PA1155 Ribonucleoside reductase, small chain nrdB 3 12.15 5.64
PA1156 Ribonucleoside reductase, large chain nrdA 4 3.57 1.37
PA1398 Hypothetical protein 1 1.56 NA
PA1566 Conserved hypothetical protein 3 3.12 0.58
PA1681 Chorismate synthase aroC 5 1.65 0.14
PA1766 hipotetikus fehérje 3 1.60 0.13
PA1847 konzervált hipotetikus fehérje 1 1.88 ze
PA1919 valószínű radikális aktiváló enzim 5 7.34 0.98
PA1920 konzervált hipotetikus fehérje 15 10.80 5.21
PA2119 Alcohol dehydrogenase (Zn dependent) 25 1.84 0.22
PA2127 Conserved hypothetical protein 6 2.46 0.12
PA2323 Probable glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase 2 1.95 NA
PA2567 Hypothetical protein 1 1.54 NA
PA2945 Conserved hypothetical protein 2 2.36 0.30
PA2991 Soluble pyridine nucleotide transhydrogenase sth 20 1.93 0.37
PA2994 NA+-translocating NADH:quinone oxidoreductase nqrF 15 1.60 0.27
PA2999* NA+-translocating NADH:ubiquinone oxidoreductase nqrA 5 1.74 0.11
PA3002 Transcription-repair coupling protein Mfd mfd 2 1.52 0.06
PA3150 LPS biosynthesis protein WbpG wbpG 1 3.72 NA
PA3185 Hypothetical protein 4 1.82 0.08
PA3391 Regulatory protein NosR nosR 5 7.75 0.98
PA3392 Nitrous oxide reductase precursor nosZ 69 3.65 0.72
PA3394 NosF protein nosF 9 4.09 0.46
PA3438 GTP cyclohydrolase I precursor folEI 1 5.58 NA
PA3515 Hypothetical protein 1 4.21 NA
PA3562* Probable phosphotransferase system enzyme I 3 2.91 0.17
PA3694 Hypothetical protein 4 1.92 0.07
PA3871 Probable peptidyl-prolyl cis-trans isomerase, PpiC type 3 2.50 0.64
PA3873 Respiratory nitrate reductase delta chain narJ 1 3.20 NA
PA3874 légúti nitrát-reduktáz béta-lánc narH 67 7.89 2.83
PA3875 légzőszervi nitrát-reduktáz alfa-lánc narG 35 7.70 3.23
PA3880 konzervált hipotetikus fehérje 8 3.88 0.98
PA3886 hipotetikus fehérje 1 7.25 NA
PA3895 Probable transcriptional regulator 2 1.49 0.00
PA3913 Probable protease 1 5.30 NA
PA3914* Molybdenum cofactor biosynthetic protein A1 moeA1 21 3.41 0.63
PA3915* Molybdopterin biosynthetic protein B1 moaB1 5 4.40 0.72
PA3918* Molybdopterin biosynthetic protein C moaC 23 1.88 0.41
PA3958 Hypothetical protein 1 2.29 NA
PA4180 Probable acetolactate synthase large subunit 2 2.16 0.53
PA4811 Nitrate-inducible formate dehydrogenase, beta subunit fdnH 3 5.85 1.85
PA4812 formiát-dehidrogenáz-O, fő alegység fdnG 4 3.46 0.64
PA4868 ureáz alfa alegység ureC 1 1.51 ze
PA4922 Azurin prekurzor azu 4 2.96 0.81
PA5005 valószínűleg karbamoil-transzferáz 42 1.59 0.24
PA5011 Heptoziltranszferáz waaC-ra 4 1.49 0.17
PA5012 Heptoziltranszferáz II waaF 6 1.45 0.11
PA5015 piruvát-dehidrogenáz aceE 111 1.98 0.42
PA5064 hipotetikus fehérje 1 1.93 NA
PA5223 UbiH protein ubiH 3 1.67 0.10
PA5296 ATP-dependent DNA helicase Rep rep 2 1.77 0.00
PA5300 Cytochrome c5 cycB 13 1.91 0.21
PA5332 Catabolite repression control protein crc 3 1.90 0.21
PA5440 Probable peptidase 1 18.54 NA
PA5496* Hypothetical protein 8 6.46 2.07
PA5497* Hypothetical protein 10 11.28 3.17
PA5508 Probable glutamine synthetase 11 2.73 0.26
PA5564 glükóz-gátolt osztódási fehérje B gidB 2 1.53 0.02
a csillaggal ( * ) jelölt ageneket az anaerob növekedés során up-szabályozottként azonosították (1).
Baz egyes fehérjékre azonosított és mennyiségileg meghatározott peptidek száma.
a cértékek a relatív fehérje bőséget, vagy az anaerob módon termesztett sejtekben a fehérje expressziójának arányát képviselik az aerob módon termesztett sejtekben.
DNS, nem értelmezhető.

2. táblázat.

P. aeruginosa fehérjék csökkent bőséggel az anaerob növekedés során

Genea protein Génnév nb Ratioc SD
PA0085 konzervált hipotetikus fehérje 3 2.15 0.26
PA0100 hipotetikus fehérje 1 1.53 NAd
PA0128 Conserved hypothetical protein 9 2.10 0.35
PA0139 Alkyl hydroperoxide reductase subunit C ahpC 655 2.50 1.29
PA0195 Still frameshift pyridine nucleotide transhydrogenase pntA 10 2.21 0.55
PA0399 Cystathionine beta-synthase 6 3.39 0.52
PA0447* Glutaryl-CoA dehydrogenase gcdH 24 5.30 1.04
PA0534 Conserved hypothetical protein 4 5.46 1.51
PA0588 Conserved hypothetical protein 78 5.56 2.52
PA0746 Probable acyl-CoA dehydrogenase 2 2.52 0.51
PA0853 Probable oxidoreductase 16 2.19 0.30
PA0854 Fumarate hydratase fumC2 9 2.36 0.34
PA0870 Aromatic amino acid aminotransferase phhC 24 1.74 0.22
PA0871 Pterin-4-alpha-carbinolamine dehydratase phhB 27 2.37 0.57
PA0872 Phenylalanine-4-hydroxylase phhA 60 2.11 0.65
PA0916 Conserved hypothetical protein 6 1.93 0.28
PA0997* Quinolone signal biosynthesis protein pqsB 3 15.54 6.73
PA0998* Quinolone signal biosynthesis protein pqsC 5 9.11 3.39
PA0999* 3-Oxoacyl- synthase III pqsD 12 5.62 1.50
PA1002* Anthranilate synthase component II phnB 1 2.30 NA
PA1228 Hypothetical protein 13 2.55 0.52
PA1529 DNA ligase lig 21 2.50 0.33
PA1574 Conserved hypothetical protein 1 2.25 NA
PA1662 Probable ClpA/B-type protease 2 2.65 0.27
PA1756 3′-Phosphoadenosine-5′-phosphosulfate reductase cysH 3 2.89 0.13
PA1772 Probable methyltransferase 4 2.34 0.43
PA1894 Hypothetical protein 9 2.48 0.94
PA1964 Probable ATP-binding component of ABC transporter 1 1.00 NA
PA2001 Acetyl-CoA acetyltransferase atoB 149 1.74 1.11
PA2007 Maleylacetoacetate isomerase maiA 10 2.45 0.47
PA2008 Fomaril-Acetaacetáz fahA 47 11.02 4.75
PA2009 Homogentizátum 1,2-dioxigenáz hmgA 4 20.39 11.50
PA2012 * valószínű Acil-CoA karboxiláz alfa lánc 7 2.24 0.19
PA2014 * valószínű ACL-CoA karboxiltranszferáz béta lánc 69 2.14 0.44
PA2044 Hypothetical protein 4 3.49 0.24
PA2069 Probable carbamoyl transferase 10 4.11 1.13
PA2081 Hypothetical protein 4 2.25 0.12
PA2112* Conserved hypothetical protein 28 3.94 0.90
PA2116 Conserved hypothetical protein 35 3.67 0.97
PA2194 Hydrogen cyanide synthase HcnB hcnB 9 3.26 0.50
PA2195 Hydrogen cyanide synthase HcnC hcnC 3 4.11 0.15
PA2247 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (alpha subunit) bkdA1 7 3.54 1.00
PA2248 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (beta subunit) bkdA2 59 2.80 1.07
PA2250 Lipoamide dehydrogenase Val lpdV 18 2.79 0.59
PA2366* Conserved hypothetical protein 1 2.70 NA
PA2552* Probable acyl-CoA dehydrogenase 13 1.99 0.70
PA2553* Probable acyl-CoA thiolase 48 2.17 0.50
PA2555* Probable AMP-binding enzyme 10 2.22 0.56
PA2850 Organic hydroperoxide resistance protein ohr 6 2.26 0.37
PA2939 Probable aminopeptidase 3 2.67 0.80
PA2981 Tetraacyldisaccharide 4′-kinase lpxK 1 13.49 NA
PA3049 Ribosome modulation factor rmf 15 3.84 0.92
PA3195 Glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase gapA 1 2.76 NA
PA3327 Probable nonribosomal peptide synthetase 1 2.16 NA
PA3328 Probable FAD-dependent monooxygenase 6 4.58 1.28
PA3329* Hypothetical protein 1 2.08 NA
PA3331 Cytochrome P450 17 5.10 2.00
PA3347 Hypothetical protein 4 1.96 0.20
PA3365 Probable chaperone 1 2.35 NA
PA3366 Aliphatic amidase amiE 1 2.00 NA
PA3481 Conserved hypothetical protein 1 1.54 NA
PA3537 Ornithine carbamoyltransferase, anabolic argF 1 5.57 NA
PA3569 3-Hydroxyisobutyrate dehydrogenase mmsB 25 3.67 0.94
PA3570 Methylmalonate-semialdehyde dehydrogenase mmsA 1 3.17 NA
PA3842 Probable chaperone 8 3.17 1.44
PA3919* Conserved hypothetical protein 7 2.19 0.36
PA4015 Conserved hypothetical protein 11 2.11 0.67
PA4129* Hypothetical protein 3 3.75 1.17
PA4132 Conserved hypothetical protein 6 2.36 1.11
PA4217 Flavin-containing monooxygenase phzS 5 5.09 1.26
PA4362 hipotetikus fehérje 2 2.17 0.29
PA4412 * MurG fehérje murG 1 3.28 ze
PA4498 valószínű metallopeptidáz 4 2.00 0.06
PA5100 Urokanáz hutU 10 4.50 1.23
PA5410 valószínű gyűrű hidroxiláló dioxigenáz, alfa alegység 1 2.76 ze
a csillaggal ( * ) jelölt ageneket az anaerob növekedés során lefelé szabályozottként azonosították (1).
Baz egyes fehérjékre azonosított és mennyiségileg meghatározott peptidek száma.
a cValues a relatív fehérje bőség, vagy az aerob módon termesztett sejtekben a fehérje expressziójának aránya az anaerob módon termesztett sejtekben.
DNS, nem értelmezhető.
eCoA, koenzim a; FAD, flavin-adenin-dinukleotid.

a kimutatott proteom változásai az oxigénfeszültség hatásai mellett az összes sűrűségfüggő szabályozás különbségeit is tükrözhetik, tekintettel a betakarított anaerob tenyészet alacsonyabb relatív sejtsűrűségére. Valójában az anaerob módon termesztett sejtekben alacsonyabb mennyiségben kimutatott 29 fehérjét olyan gének kódolják, amelyekről korábban kimutatták, hogy kvórumérzékelés indukált (5, 16, 17). Ezek közé tartoznak a HcnB és a HcnC hidrogén-cianid szintáz alegységek; a Pseudomonas kinolon jel bioszintetikus enzimek PqsB, PqsC, és PqsD; és PhnB (táblázat (Table2).2). Eredményeinkkel összhangban a hcn és a pqs géneket transzkripcionálisan elnyomták az anaerob növekedés során egy nemrégiben végzett DNS mikroarray elemzéssel, aerob és anaerob tenyészetek felhasználásával, azonos sejtsűrűséggel (1) (táblázat (22.táblázat).

azonosítani szekretált P. aeruginosa fehérjék az anaerob növekedés során megváltozott szintekkel a tenyészet felülúszó fehérjéit koncentráltuk (11), és nátrium-dodecil-szulfát-poliakrilamid gélelektroforézissel (SDS-PAGE) választottuk el (ábra. (Ábra.1).1). Négy Coomassie-festett fehérje sávot azonosítottak és elemeztek, mint egy korábbi vizsgálatban (4) (ábra. (Ábra.1).1). Az anaerob növekedés során három szekretált fehérje mennyisége csökkent: a CbpD kitinkötő fehérje, a LasB elasztáz és egy ismeretlen funkciójú fehérje, amelyet a PA0572 kódol. Korábbi proteomikus vizsgálatok azt találták, hogy mindhárom fehérje kvórumérzékelés indukált (11). Úgy tűnt, hogy az egyik fehérje az anaerob növekedés során megnövekedett, és vagy a flagelláris filament protein FliC vagy a flagelláris capping protein FliD (e két fehérje jellemzőinek átfedése miatt).

P. aeruginosa szekretált fehérjék, amelyek az anaerob növekedés során expresszálódnak. A P. aeruginosa tenyészet felülúszó fehérjéit 12%-os SDS-PAGE-vel szétválasztottuk, és Coomassie-val történő festéssel detektáltuk. Az anaerob növekedés során (az aerob növekedéshez viszonyítva) bőségesen megváltozott fehérjéket jelöljük. – O2, anaerob növekedés; + O2, aerob növekedés.

a legtöbb P. aeruginosa külső membránfehérje nem tartalmaz cisztein maradványokat, ezért nem elemezhető az ICAT (4) segítségével. Ezért kétdimenziós (2D) oldalt használtunk kiegészítő módszerként (4). Számos külső membránfehérje (ábra. (Ábra.2) 2) kivágtuk a 2D gélből és azonosítottuk (4). Úgy tűnt, hogy az anaerob növekedés során az OprE bősége növekszik, míg az OprF és az OprH bősége csökken (ábra. (Ábra.2).2). Mindhárom fehérje több fajként vándorolt az izoelektromos fókuszálás során (ábra. (Ábra.2).2). Az anaerob növekedés során az OprF csökkent mennyiségét a külső membránfehérjék immunoblotálásával igazolták (az adatok nem jelennek meg), poliklonális Anti-OprF antiszérum alkalmazásával (Robert Hancock ajándéka, British Columbia Egyetem, Vancouver, Kanada).

P. aeruginosa külső membránfehérjék expresszálódnak anaerob növekedés során. A külső membránfehérjéket 12% 2D PAGE-vel elválasztottuk, és Coomassie-val festettük. A fehérjéket az első dimenzióban izoelektromos fókuszálással (IEF) választottuk el 4-7 (A) és 6-11 (B) pI tartományban. Az anaerob növekedés során (az aerob növekedéshez viszonyítva) bőségesen megváltozott fehérjéket nyilakkal jelöljük. – O2, anaerob növekedés; + O2, aerob növekedés.

a P. aeruginosa fehérjék közül, amelyek megnövekedett bőséget mutattak az anaerob növekedés során (táblázat (Table1; 1; ábra. Fig.1), 1), több hozzájárul a biofilmek kialakításában és fejlesztésében részt vevő funkciókhoz. Ezek a fehérjék közé tartozik a katabolit elnyomás kontroll fehérje Crc és a rángatózó motilitás fehérjék PilU, PilG, és ChpA (12, 13, 18). Az anaerob sejtekben megnövekedett Crc-szintnek megfelelően (1. táblázat),1. táblázat) a Crc-elnyomás ismert célpontjainak száma csökkent (2.táblázat),2. táblázat), beleértve a hmgA és bkd géntermékeket (6, 10). A ChpA és a PilG egy komplex szabályozó rendszer alkotóelemei, amelyek szabályozzák a rángatózó motilitást (18). Ezek az eredmények együttesen azt sugallják, hogy a biofilm képződését befolyásoló sejtfelszíni függelékek expressziója vagy funkciója megváltozik az anaerob növekedés során. Az ilyen változások hozzájárulhatnak az anaerob módon növekvő P. aeruginosa esetében megfigyelt megnövekedett biofilmképződéshez (20).

az anaerob növekedés során megfigyelt külső membránfehérjék változásain kívül az ICAT elemzés azt mutatta, hogy a P. aeruginosa lipopoliszacharid (LPS) bioszintézisében részt vevő számos enzimet az anaerob növekedés során magasabb szinten expresszáltak (táblázat (1.táblázat).1). Ezek közé tartozott a béta-hidroxiláz lpxo2 homológja, amely hidroxilálja az a lipid zsírsavakat (14); az LPS mag heptoziltranszferázok WaaC és WaaF (2, 15); és a WbpG, amelyet egy hosszú B-sávú o antigén szintézisében részt vevő géncsoport kódol. Ezek az eredmények arra utalnak, hogy az LPS-tartalom megváltozhat az anaerobiosis következtében.

összefoglalva, a P. aeruginosa proteom jelentősen megváltozik az anaerob növekedés során. Összesen 617 fehérjét azonosítottunk: 610-et ICAT elemzéssel, 4-et SDS-oldal elemzéssel és 3-at 2D-oldal elemzéssel. A 617 azonosított fehérje közül 158 abundanciája az anaerob és az aerob módon termesztett sejtek között változott. Mivel a P. aeruginosa alacsonyabb sejtsűrűséget ért el anaerob növekedési körülmények között, mint aerob növekedési körülmények között, a fehérje expressziójának sűrűségfüggő változásai hozzájárulhattak az anaerob növekedés során észlelt proteomhoz. Ennek ellenére a baktériumsejtek sűrűsége valószínűleg hasonlóan korlátozott sok környezeti fülkében, ahol több tápanyag (beleértve az oxigént is) kevés. Ezért az általunk észlelt fehérjeszint-változások hozzájárulnak annak megértéséhez, hogy a baktériumok proteomja és metabolikus állapota hogyan változik a különböző környezetekre adott válaszként. A bakteriális fehérjetartalom közvetlen elemzése robusztus technológia a baktériumok specifikus környezeti résekhez való alkalmazkodásának megfigyelésére, beleértve a CF légutakat is.

Vélemény, hozzászólás?

Az e-mail-címet nem tesszük közzé.

More: