PMC

Pseudomonas aeruginosa je všudypřítomné environmentální gram-negativní bakterie se nachází v půdě a vodě. Je to také oportunní patogen, který způsobuje infekce u jedinců s vrozenými imunitními defekty, včetně pacientů s cystickou fibrózou (CF) (8). P. aeruginosa se setkává s prostředím s nízkým obsahem kyslíku v půdě a ve vodě. Důkazy naznačují, že u lidí s CF se bakterií může, alespoň z části, být v prostředí s nízkým obsahem kyslíku v mukopurulentní masy nebo biofilmy v rámci dýchacích cest (19). P. aeruginosa je schopen růst anaerobně za přítomnosti terminální elektronové akceptory, např. dusičnan (NO3−), dusitanů (NO2−), a oxidu dusného (N2O), nebo když l-arginin je substrátem pro růst (21). Hlen CF dýchacích cest je dostatečně bohatý na NO3 – a NO2-na podporu anaerobního růstu P. aeruginosa (7, 19). V této studii bylo provedeno srovnání proteomu P. aeruginosa během růstu v přítomnosti a nepřítomnosti kyslíku.

P. kmen aeruginosa PAO1 získaný od Steve Lory (Harvard Medical School, Boston, MA) byl pěstován ve 125 ml baňkách v Luria vývaru (LB) doplněném 1% KNO3 s třepáním při 200 ot / min při 37°C pro aerobní růst. Anaerobní růst byl dokončen, jak bylo popsáno výše (9) v 80 ml média ve 100 ml lahvičkách s Wheatonovým sérem (Fisher Scientific) s gumovými zátkami. Médium bylo zbaveno kyslíku tím, že bylo vystaveno probublávání plynem N2 po dobu 1 hodiny. Jak pro aerobní a anaerobní podmínky, bakterie byly sklizeny v pozdní logaritmické fáze růstu, na kterém místě cell density (optická hustota při 600 nm) anaerobní kultury bylo 44% hustota aerobní kultury. Nebyl zjištěn žádný významný rozdíl mezi pH sklizených kultur (pH 7,6 pro anaerobní kulturu a pH 7,4 pro aerobní kulturu). Stejné množství denaturovaného a redukovaného celobuněčného proteinu (2 .0 mg z každého růst státu), byly označeny buď světlo (12C) nebo těžké (13C) štěpitelné izotopy-coded affinity tag (ICAT) činidla (Applied Biosystems, Foster City, CA), zpracovány a analyzovány jak bylo popsáno dříve (3). Hlášená data jsou průměry nejméně dvou nezávislých experimentů.

šest set deset proteinů P. aeruginosa bylo identifikováno a kvantifikováno pomocí ICAT (úplný seznam proteinů viz tabulka S1 v doplňkovém materiálu). Mezi 151 proteiny, jejichž hojnost se změnila během anaerobního růstu, 76 bylo vyšší v hojnosti (Tabulka (Tabulka 1) 1) a 75 bylo v hojnosti nižší (tabulka (Tabulka2).2). Jak se dalo očekávat, 13 proteinů, které se podílejí na anaerobní růst a denitrifikace (včetně výrobků z nir, nos, a nar geny) byly vyjádřeny na vyšších úrovních během anaerobní růst (Tabulky (Tabulka1).1). Tyto výsledky naznačují, že pozorované změny obsahu bílkovin zahrnují změny vyplývající konkrétně z růstu při různých hladinách kyslíku.

tabulka 1.

P. aeruginosa proteiny se zvýšenou hojnost během anaerobní růst

Genea Bílkovin Gen jméno poznámka Ratioc SD
PA0025* Shikimate dehydrogenase aroE 3 1.79 0.04
PA0130 Pravděpodobné, aldehyd dehydrogenázy 10 2.28 0.22
PA0132 Beta-alanine-pyruvate transaminase 10 1.64 0.31
PA0286 Probable fatty acid desaturase 5 4.61 0.42
PA0300 Polyamine transport protein spuD 7 1.65 0.17
PA0321 Probable acetylpolyamine aminohydrolase 1 1.91 NAd
PA0336 Nudix hydrolázy YgdP ygdP 13 1.54 0.40
PA0396 Záškuby pohyblivost bílkovin PilU pilU 8 1.88 0.25
PA0408 Záškuby pohyblivost bílkovin PilG pilG 2 1.63 0.10
PA0413 Složka signálu systému chpA 12 2.10 0.35
PA0520 Regulatory protein NirQ nirQ 59 2.21 0.33
PA0655 Hypothetical protein 34 2.63 0.41
PA0658 Probable short-chain dehydrogenase 1 1.96 NA
PA0844 Hemolytic phospholipase C precursor plcH 1 1.72 NA
PA0867 Hypothetical protein 4 2.33 0.12
PA0934 GTP pyrophosphokinase relA 6 1.70 0.08
PA0936 LPS biosynthetic protein LpxO2 lpxO2 14 2.17 0.35
PA1155 Ribonucleoside reductase, small chain nrdB 3 12.15 5.64
PA1156 Ribonucleoside reductase, large chain nrdA 4 3.57 1.37
PA1398 Hypothetical protein 1 1.56 NA
PA1566 Conserved hypothetical protein 3 3.12 0.58
PA1681 Chorismate synthase aroC 5 1.65 0.14
PA1766 Hypotetický protein 3 1.60 0.13
PA1847 Zachovaných hypotetický protein 1 1.88 NA
PA1919 Pravděpodobné radikální-aktivace enzymů 5 7.34 0.98
PA1920 Zachovaných hypotetický protein 15 10.80 5.21
PA2119 Alcohol dehydrogenase (Zn dependent) 25 1.84 0.22
PA2127 Conserved hypothetical protein 6 2.46 0.12
PA2323 Probable glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase 2 1.95 NA
PA2567 Hypothetical protein 1 1.54 NA
PA2945 Conserved hypothetical protein 2 2.36 0.30
PA2991 Soluble pyridine nucleotide transhydrogenase sth 20 1.93 0.37
PA2994 NA+-translocating NADH:quinone oxidoreductase nqrF 15 1.60 0.27
PA2999* NA+-translocating NADH:ubiquinone oxidoreductase nqrA 5 1.74 0.11
PA3002 Transcription-repair coupling protein Mfd mfd 2 1.52 0.06
PA3150 LPS biosynthesis protein WbpG wbpG 1 3.72 NA
PA3185 Hypothetical protein 4 1.82 0.08
PA3391 Regulatory protein NosR nosR 5 7.75 0.98
PA3392 Nitrous oxide reductase precursor nosZ 69 3.65 0.72
PA3394 NosF protein nosF 9 4.09 0.46
PA3438 GTP cyclohydrolase I precursor folEI 1 5.58 NA
PA3515 Hypothetical protein 1 4.21 NA
PA3562* Probable phosphotransferase system enzyme I 3 2.91 0.17
PA3694 Hypothetical protein 4 1.92 0.07
PA3871 Probable peptidyl-prolyl cis-trans isomerase, PpiC type 3 2.50 0.64
PA3873 Respiratory nitrate reductase delta chain narJ 1 3.20 NA
PA3874 Respirační nitrát reduktázy beta řetězce narH 67 7.89 2.83
PA3875 Respirační nitrát reduktázy alfa řetězce narG 35 7.70 3.23
PA3880 Zachovaných hypotetický protein 8 3.88 0.98
PA3886 Hypotetický protein 1 7.25 NA
PA3895 Probable transcriptional regulator 2 1.49 0.00
PA3913 Probable protease 1 5.30 NA
PA3914* Molybdenum cofactor biosynthetic protein A1 moeA1 21 3.41 0.63
PA3915* Molybdopterin biosynthetic protein B1 moaB1 5 4.40 0.72
PA3918* Molybdopterin biosynthetic protein C moaC 23 1.88 0.41
PA3958 Hypothetical protein 1 2.29 NA
PA4180 Probable acetolactate synthase large subunit 2 2.16 0.53
PA4811 Nitrate-inducible formate dehydrogenase, beta subunit fdnH 3 5.85 1.85
PA4812 dehydrogenázy Mravenčanu-O, hlavní podjednotku fdnG 4 3.46 0.64
PA4868 Ureázy alfa podjednotku ureC 1 1.51 NA
PA4922 Azurin předchůdce azu 4 2.96 0.81
PA5005 Pravděpodobně karbamoyl transferázy 42 1.59 0.24
PA5011 Heptosyltransferase waaC 4 1.49 0.17
PA5012 Heptosyltransferase II waaF 6 1.45 0.11
PA5015 Pyruvát dehydrogenázy aceE 111 1.98 0.42
PA5064 Hypotetický protein 1 1.93 NA
PA5223 UbiH protein ubiH 3 1.67 0.10
PA5296 ATP-dependent DNA helicase Rep rep 2 1.77 0.00
PA5300 Cytochrome c5 cycB 13 1.91 0.21
PA5332 Catabolite repression control protein crc 3 1.90 0.21
PA5440 Probable peptidase 1 18.54 NA
PA5496* Hypothetical protein 8 6.46 2.07
PA5497* Hypothetical protein 10 11.28 3.17
PA5508 Probable glutamine synthetase 11 2.73 0.26
PA5564 Glukóza inhibuje dělení bílkovin B gidB 2 1.53 0.02
aGenes označené hvězdičkou (*) byly identifikovány jako up-regulovány během anaerobní růst (1).
počet peptidů identifikovaných a kvantifikovaných pro každý protein.
cValues představují relativní množství proteinu nebo poměr exprese proteinu v buňkách pěstovaných anaerobně k expresi proteinu v buňkách pěstovaných aerobně.
dNA, neuplatňuje se.

tabulka 2.

P. aeruginosa proteiny se sníženou hojnosti během anaerobní růst

Genea Proteine Gen jméno poznámka Ratioc SD
PA0085 Zachovaných hypotetický protein 3 2.15 0.26
PA0100 Hypotetický protein 1 1.53 NAd
PA0128 Conserved hypothetical protein 9 2.10 0.35
PA0139 Alkyl hydroperoxide reductase subunit C ahpC 655 2.50 1.29
PA0195 Still frameshift pyridine nucleotide transhydrogenase pntA 10 2.21 0.55
PA0399 Cystathionine beta-synthase 6 3.39 0.52
PA0447* Glutaryl-CoA dehydrogenase gcdH 24 5.30 1.04
PA0534 Conserved hypothetical protein 4 5.46 1.51
PA0588 Conserved hypothetical protein 78 5.56 2.52
PA0746 Probable acyl-CoA dehydrogenase 2 2.52 0.51
PA0853 Probable oxidoreductase 16 2.19 0.30
PA0854 Fumarate hydratase fumC2 9 2.36 0.34
PA0870 Aromatic amino acid aminotransferase phhC 24 1.74 0.22
PA0871 Pterin-4-alpha-carbinolamine dehydratase phhB 27 2.37 0.57
PA0872 Phenylalanine-4-hydroxylase phhA 60 2.11 0.65
PA0916 Conserved hypothetical protein 6 1.93 0.28
PA0997* Quinolone signal biosynthesis protein pqsB 3 15.54 6.73
PA0998* Quinolone signal biosynthesis protein pqsC 5 9.11 3.39
PA0999* 3-Oxoacyl- synthase III pqsD 12 5.62 1.50
PA1002* Anthranilate synthase component II phnB 1 2.30 NA
PA1228 Hypothetical protein 13 2.55 0.52
PA1529 DNA ligase lig 21 2.50 0.33
PA1574 Conserved hypothetical protein 1 2.25 NA
PA1662 Probable ClpA/B-type protease 2 2.65 0.27
PA1756 3′-Phosphoadenosine-5′-phosphosulfate reductase cysH 3 2.89 0.13
PA1772 Probable methyltransferase 4 2.34 0.43
PA1894 Hypothetical protein 9 2.48 0.94
PA1964 Probable ATP-binding component of ABC transporter 1 1.00 NA
PA2001 Acetyl-CoA acetyltransferase atoB 149 1.74 1.11
PA2007 Maleylacetoacetate isomerase maiA 10 2.45 0.47
PA2008 Fomarylacetaacetase fahA 47 11.02 4.75
PA2009 Homogentisate 1,2-dioxygenase hmgA 4 20.39 11.50
PA2012* Pravděpodobné, acyl-CoA carboxylase alfa řetězce 7 2.24 0.19
PA2014* Pravděpodobné ACL-CoA carboxyltransferase beta řetězce 69 2.14 0.44
PA2044 Hypothetical protein 4 3.49 0.24
PA2069 Probable carbamoyl transferase 10 4.11 1.13
PA2081 Hypothetical protein 4 2.25 0.12
PA2112* Conserved hypothetical protein 28 3.94 0.90
PA2116 Conserved hypothetical protein 35 3.67 0.97
PA2194 Hydrogen cyanide synthase HcnB hcnB 9 3.26 0.50
PA2195 Hydrogen cyanide synthase HcnC hcnC 3 4.11 0.15
PA2247 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (alpha subunit) bkdA1 7 3.54 1.00
PA2248 2-Oxoisovalerate dehydrogenase (beta subunit) bkdA2 59 2.80 1.07
PA2250 Lipoamide dehydrogenase Val lpdV 18 2.79 0.59
PA2366* Conserved hypothetical protein 1 2.70 NA
PA2552* Probable acyl-CoA dehydrogenase 13 1.99 0.70
PA2553* Probable acyl-CoA thiolase 48 2.17 0.50
PA2555* Probable AMP-binding enzyme 10 2.22 0.56
PA2850 Organic hydroperoxide resistance protein ohr 6 2.26 0.37
PA2939 Probable aminopeptidase 3 2.67 0.80
PA2981 Tetraacyldisaccharide 4′-kinase lpxK 1 13.49 NA
PA3049 Ribosome modulation factor rmf 15 3.84 0.92
PA3195 Glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase gapA 1 2.76 NA
PA3327 Probable nonribosomal peptide synthetase 1 2.16 NA
PA3328 Probable FAD-dependent monooxygenase 6 4.58 1.28
PA3329* Hypothetical protein 1 2.08 NA
PA3331 Cytochrome P450 17 5.10 2.00
PA3347 Hypothetical protein 4 1.96 0.20
PA3365 Probable chaperone 1 2.35 NA
PA3366 Aliphatic amidase amiE 1 2.00 NA
PA3481 Conserved hypothetical protein 1 1.54 NA
PA3537 Ornithine carbamoyltransferase, anabolic argF 1 5.57 NA
PA3569 3-Hydroxyisobutyrate dehydrogenase mmsB 25 3.67 0.94
PA3570 Methylmalonate-semialdehyde dehydrogenase mmsA 1 3.17 NA
PA3842 Probable chaperone 8 3.17 1.44
PA3919* Conserved hypothetical protein 7 2.19 0.36
PA4015 Conserved hypothetical protein 11 2.11 0.67
PA4129* Hypothetical protein 3 3.75 1.17
PA4132 Conserved hypothetical protein 6 2.36 1.11
PA4217 Flavin-containing monooxygenase phzS 5 5.09 1.26
PA4362 Hypotetický protein 2 2.17 0.29
PA4412* MurG protein murG 1 3.28 NA
PA4498 Pravděpodobné metallopeptidase 4 2.00 0.06
PA5100 Urocanase hutU 10 4.50 1.23
PA5410 Pravděpodobné prsten hydroxylating dioxygenase, alpha podjednotky 1 2.76 NA
aGenes označené hvězdičkou (*) byly identifikovány jako down-regulovány během anaerobní růst (1).
počet peptidů identifikovaných a kvantifikovaných pro každý protein.
cValues představují relativní množství proteinu nebo poměr exprese proteinu v buňkách pěstovaných aerobně k expresi proteinu v buňkách pěstovaných anaerobně.
dNA, neuplatňuje se.
eCoA, koenzym A; FAD, flavinadenin dinukleotid.

změny v detekována proteomu může také odrážet rozdíly ve všech hustoty-závisí nařízení kromě účinků kyslíku napětí, vzhledem k nižší relativní hustota buněk sklizených anaerobní kultury. Vskutku, 29 bílkoviny zjištěné v nižší hojnosti v anaerobně pěstovaných buněk jsou kódovány geny v minulosti ukázal jako quorum sensing indukované (5, 16, 17). Patří sem podjednotky kyanovodíkové syntázy HcnB a HcnC; Pseudomonas chinolon signalizuje biosyntetické enzymy PqsB, PqsC a PqsD; a PhnB (tabulka (Table2).2). V souladu s našimi výsledky, hcn a pqs geny byly nalezeny také být transkripčně potlačené během anaerobní růst podle posledních DNA microarray analýzy pomocí aerobní a anaerobní kultury sklizeny ve stejné hustoty buněk (1) (Tabulky (Table22).

k identifikaci vylučovaného P. proteiny aeruginosa se změněnými hladinami během anaerobního růstu byly supernatantní proteiny kultury koncentrovány (11)a odděleny elektroforézou dodecylsulfát-polyakrylamidový gel (SDS-PAGE) (obr. (Obr.1).1). Byly identifikovány a analyzovány čtyři proteinové pásy obarvené Coomassiem, odpovídající diferencovaně exprimovaným proteinům, jako v předchozí studii (4) (obr. (Obr.1).1). Na abundances tří vylučované proteiny se objevil ke snížení během anaerobní růst: CbpD chitin-vázající protein, LasB elastázu, a protein neznámé funkce kódovány PA0572. Předchozí proteomické studie zjistily, že všechny tři tyto proteiny jsou indukovány snímáním kvora (11). Jeden protein se zdá být zvýšena v hojnosti během anaerobní růst a byl identifikován jako buď bičíkový vlákno proteinu FliC nebo bičíkový capping protein FliD (vzhledem k překrývání charakteristik těchto dvou proteinů).

P. aeruginosa vylučované proteiny exprimované během anaerobního růstu. Supernatantní proteiny kultury P. aeruginosa byly odděleny 12% stránkou SDS a detekovány barvením Coomassie. Proteiny, které se během anaerobního růstu (vzhledem k aerobnímu růstu) změnily v hojnosti, jsou označeny. −O2, anaerobní růst; +O2, aerobní růst.

většina proteinů vnější membrány P. aeruginosa neobsahuje zbytky cysteinu, a proto jej nelze analyzovat pomocí ICAT (4). Proto byla jako doplňková metoda (4) použita dvourozměrná (2D) stránka. Několik vnějších membránových proteinů (obr. (Obr.2) 2) byly vyříznuty z 2D gelu a identifikovány (4). OprE se zdálo, že se během anaerobního růstu zvyšuje hojnost, zatímco OprF a OprH se zdálo, že se hojnost snižuje (obr. (Obr.2).2). Všechny tři proteiny migrovaly jako více druhů během izoelektrické zaostřování (obr. (Obr.2).2). Snížil množství OprF během anaerobní růst byl potvrzen imunoblotingu z vnější membránové proteiny (data nejsou zobrazena), pomocí polyklonální anti-OprF antisérum (dárek od Robert Hancock, University of British Columbia v Vancouver, Kanada).

P. aeruginosa vnější membránové proteiny exprimované během anaerobního růstu. Vnější membránové proteiny byly odděleny 12% 2D stránkou a detekovány barvením Coomassie. Proteiny byly rozděleny v prvním rozměru izoelektrickou fokusací (IEF) v pI rozsahy 4 až 7 (a) a 6 až 11 (B). Proteiny, které se během anaerobního růstu (vzhledem k aerobnímu růstu) změnily v hojnosti, jsou označeny šipkami. −O2, anaerobní růst; +O2, aerobní růst.

mezi proteiny P. aeruginosa, které vykazovaly zvýšenou hojnost během anaerobního růstu (tabulka (Tabulka1; 1; obr. Obr.1), 1), několik přispívá k funkcím podílejícím se na tvorbě a vývoji biofilmů. Tyto proteiny zahrnují protein Crc pro kontrolu katabolitů a proteiny motility záškuby PilU, PilG a ChpA (12, 13, 18). V souladu se zvýšenou úrovní Crc v anaerobně pěstované buňky (Tabulky (Tabulka1),1), známý cíle Crc represe byly sníženy v hojnosti (Tabulce (Tabulka2),2), včetně hmgA a bkd genových produktů (6, 10). ChpA a PilG jsou součástí komplexního regulačního systému kontrolujícího motilitu záškubů (18). Celkově tyto výsledky naznačují, že exprese nebo funkce přídavků buněčného povrchu, které ovlivňují tvorbu biofilmu, se během anaerobního růstu mění. Tyto změny mohou přispět ke zvýšené tvorbě biofilmu pozorované u p.aeruginosa rostoucího anaerobně (20).

kromě změn ve vnějších membránových proteinů pozorovány při anaerobní růst, ICAT analýza ukázala, že několik enzymů podílejících se na biosyntéze P. aeruginosa lipopolysacharid (LPS) byly vyjádřeny na vyšších úrovních během anaerobní růst (Tabulky (Tabulka1).1). Jednalo se o homolog beta-hydroxylázy LpxO2, které hydroxylates lipidů A mastných kyselin (14); LPS core heptosyltransferases WaaC a WaaF (2, 15); a WbpG, která je kódována genem clusteru, který se podílí na syntéze dlouhé B-band O antigen. Tyto výsledky naznačují, že obsah LPS by mohl být změněn v důsledku anaerobiózy.

stručně řečeno, proteom P. aeruginosa se během anaerobního růstu významně mění. Identifikovali jsme celkem 617 proteinů: 610 analýzou ICAT, 4 analýzou SDS a 3 analýzou 2D stránek. Z 617 identifikovány proteiny, abundances 158 pohybovala mezi pěstovány anaerobně i aerobně pěstované buňky. Protože P. aeruginosa dosáhl nižší hustoty buněk v rámci našich anaerobních růstových podmínek, než za aerobních podmínek růstu, hustoty závislé změny v expresi bílkovin, mohou přispět k proteomu, které jsme zjistili během anaerobní růst. Nicméně hustota bakteriálních buněk bude pravděpodobně podobně omezená v mnoha environmentálních výklencích, kde je více živin (včetně kyslíku) vzácné. Změny hladin bílkovin, které jsme zjistili, proto přispívají k pochopení toho, jak se proteom a metabolický stav bakterií liší v reakci na různá prostředí. Přímá analýza obsahu bakteriálních bílkovin je robustní technologie pro pozorování adaptace bakterií na specifické environmentální výklenky, včetně dýchacích cest CF.

Napsat komentář

Vaše e-mailová adresa nebude zveřejněna.

More: